摘 要:大麻(Cannabis sativa L.)作為一種擁有悠久歷史和獨(dú)特藥用價值的栽培作物,長期以來受到1961年麻醉品單一公約的限制。然而,最近的法律法規(guī)調(diào)整使得大麻在研究和藥用等領(lǐng)域的種植和應(yīng)用逐漸放寬,為深入探究其科學(xué)特性和潛在應(yīng)用開辟了新的可能性。本綜述致力于全面介紹大麻基因家族的鑒定與生物信息學(xué)分析領(lǐng)域的最新進(jìn)展,包括但不限于編碼氨基酸數(shù)目、等電點(diǎn)、染色體定位、蛋白結(jié)構(gòu)、基因結(jié)構(gòu)、保守結(jié)構(gòu)域、啟動子區(qū)順式作用元件以及在不同組織部位的表達(dá)情況等多個方面。通過對大麻基因的這些精細(xì)分析,為探究基因功能,加速大麻分子育種、遺傳改良方面研究提供了依據(jù)。此外,這些研究還有助于加速大麻分子育種和遺傳改良的進(jìn)程,有望推動大麻在醫(yī)學(xué)、工業(yè)和農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域的應(yīng)用。本綜述還探討了未來大麻研究的潛在方向和重要性,為這一領(lǐng)域的進(jìn)一步發(fā)展提供了有益的參考,展望了大麻在科學(xué)與應(yīng)用之間的巨大潛力。
關(guān)鍵詞:大麻;基因家族;生物信息學(xué)分析;基因功能
大麻(Cannabis sativa L.)是大麻科(Cannabaceae)的一員,是世界上古老的馴化作物之一(Long et al., 2017)。它起源于中亞地區(qū),隨后迅速傳播到亞洲和歐洲。如今,全球各地都有大麻的種植。大麻的基因組是二倍體(2n=20),包括9對常染色體和1對性染色體(X和Y)組成,因此是典型的雌雄異株植物(張效霏和張利國, 2022),野生大麻基因組大小為812.5Mb(Gao et al., 2020)。根據(jù)四氫大麻酚(THC)含量將大麻分為工業(yè)大麻和毒品型大麻。工業(yè)大麻的THC含量<0.3%,而毒品型大麻的THC含量>0.3% (張利國, 2022)。大麻作為一種多用途植物被應(yīng)用于各個領(lǐng)域,包括農(nóng)業(yè)、食品、飼料、化妝品、建筑和制藥行業(yè)(Piluzza et al., 2013; 張利國等, 2021; 張利國, 2023)。此外,大麻還可以用來制備纖維、刨花、生物建筑和保溫材料,以及具有藥理學(xué)意義的生物活性化合物(Irakli et al., 2019)。隨著大麻應(yīng)用范圍不斷擴(kuò)大,市場潛力劇增,大麻遺傳育種、分子育種等方面的發(fā)展刻不容緩,對大麻的研究也需要更深入。本綜述撰寫了大麻基因家族鑒定及生物信息學(xué)分析方面的應(yīng)用進(jìn)展,為探究基因功能,加速大麻分子育種、遺傳改良方面研究提供了科學(xué)依據(jù)。
1基因家族鑒定與生物信息學(xué)分析技術(shù)
基因家族是一組基因,它們在結(jié)構(gòu)和功能上表現(xiàn)出明顯的相似性,通常編碼相似的蛋白質(zhì)產(chǎn)物?;蚣易宓蔫b定在現(xiàn)代生物學(xué)研究中具有重要意義。它可以揭示出在研究物種中具有相似功能的基因的數(shù)量、保守性程度、變異特征,以及它們是否表現(xiàn)出特異性的表達(dá)模式。生物信息學(xué)分析是一門綜合性的領(lǐng)域,包括了多個關(guān)鍵領(lǐng)域,如基因組分析、蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)分析、轉(zhuǎn)錄組分析等。在這些分析中,一系列技術(shù)和工具被用來獲取有關(guān)基因和蛋白質(zhì)的基本信息。
染色體定位分析可以了解基因在染色體上的位置,這對于研究基因組結(jié)構(gòu)和組織非常重要。內(nèi)含子/外顯子分析有助于確定基因的基本結(jié)構(gòu),包括編碼區(qū)域和調(diào)控區(qū)域。表達(dá)譜分析表明允許研究基因的表達(dá)模式,從而深入了解它們在不同條件下的功能。通過ORF (開放閱讀框)分析,可以找到基因中編碼蛋白質(zhì)的區(qū)域,這對于蛋白質(zhì)功能的理解至關(guān)重要。啟動子預(yù)測、轉(zhuǎn)錄因子分析和CpG島分析等技術(shù)則可用于識別轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)的順式作用元件,從而為基因調(diào)控機(jī)制的研究提供了基礎(chǔ)。
此外,通過對蛋白質(zhì)的性質(zhì)進(jìn)行基本性質(zhì)分析、疏水性分析、亞細(xì)胞定位、信號肽預(yù)測以及跨膜區(qū)預(yù)測,可以初步評估和預(yù)測基因編碼蛋白質(zhì)的性質(zhì),這對于指導(dǎo)實(shí)驗(yàn)研究方向具有重要的參考意義?;蚣易彖b定與生物信息學(xué)分析技術(shù)的結(jié)合,為研究人員提供了深入探究基因與蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)、功能和調(diào)控機(jī)制的工具,為生命科學(xué)領(lǐng)域的發(fā)展和創(chuàng)新提供了強(qiáng)有力的支持。這些技術(shù)的不斷發(fā)展和應(yīng)用,將繼續(xù)推動對生物學(xué)中復(fù)雜現(xiàn)象的理解,可以期待在未來更深入地探索生命的奧秘,并將這些知識應(yīng)用于解決人類面臨的各種挑戰(zhàn),為醫(yī)學(xué)、農(nóng)業(yè)、生物工程等領(lǐng)域的應(yīng)用提供更多可能性。
2纖維合成分析
WRKY轉(zhuǎn)錄因子是高等植物中最大的轉(zhuǎn)錄因子家族之一。在大麻(Cannabis sativa)基因組中,已成功鑒定出39個CasWRKYs基因,分布于10條染色體上。這些基因的蛋白質(zhì)長度在193~727氨基酸之間變化,而它們的基因結(jié)構(gòu)表現(xiàn)出2~5個外顯子和1~4個內(nèi)含子的多樣性。通過基因結(jié)構(gòu)和系統(tǒng)發(fā)育分析,CasWRKY蛋白被分成了7個亞組。此外,CasWRKYs基因的啟動子區(qū)域中含有較多與植物激素赤霉素相關(guān)的P-box元件,證明了13個CasWRKY基因?qū)Τ嗝顾孛{迫的響應(yīng)。這些基因在大麻植株的莖的生長和纖維發(fā)育過程中扮演著重要角色(Wei et al., 2022)。
阿拉伯半乳聚糖蛋白(fasciclin-like arabinogalactan proteins, FLAs)屬于阿拉伯半乳聚糖蛋白(Arabinogalactan protein, AGP)超家族,參與了植物的生長、發(fā)育以及抵御非生物脅迫,尤其是在細(xì)胞壁合成過程中發(fā)揮著重要作用。通過對大麻基因組和EST數(shù)據(jù)庫的分析,已鑒定出23個CsaFLAs基因,并將其劃分為4個類群。這些基因在植株不同部位表達(dá)差異明顯,一些基因在纖維生長的早期階段高度表達(dá),而其他基因則更多地表達(dá)在莖的中部和基部,參與了次生細(xì)胞壁的形成。生物信息學(xué)分析揭示了CsaFLAs基因(包括FLA3、FLA12、FLA13、FLA15、FLA16、FLA18、FLA19)的啟動子區(qū)域在老莖部位以較高水平表達(dá),并且共享一個由MYB3 (屬于MYB家族S4亞群的轉(zhuǎn)錄抑制因子)識別的motif,這表明在老莖和幼莖區(qū)域存在一個調(diào)控CsaFLAs基因表達(dá)的復(fù)雜轉(zhuǎn)錄調(diào)控網(wǎng)絡(luò)(Guerriero et al., 2017)。
水通道蛋白在植物中形成通道,有助于水、尿素以及硼和硅等元素的傳輸,對于控制作物的纖維長度具有重要作用。Guerriero等(2019)通過分析已公開的基因組數(shù)據(jù),首次確定了大麻的水通道蛋白基因家族,共鑒定出30個家族成員,分為五個亞家族(NIP, PIP, TIP, SIP, XIP)。其中,CsaNIP2-1蛋白與硅滲透性相關(guān),并在花和莖中表達(dá)較高水平。
纖維素合成酶(cellulose synthase, CesA)在纖維素的合成過程中扮演著關(guān)鍵角色。郭蓉等(2022)對大麻中的纖維素合成酶家族成員進(jìn)行了鑒定,總計(jì)鑒定出8個家族成員,分布在5條染色體上,這些蛋白質(zhì)的長度在1044~1480氨基酸之間。它們的亞細(xì)胞定位顯示均位于質(zhì)膜上,表現(xiàn)出親水性質(zhì),并與擬南芥中的同源基因家族存在一定的相似性。這個基因家族具有高度的保守性,除了CsCesA3之外,其余家族成員均含有較多的外顯子,并且motif的分布基本一致。啟動子區(qū)域包含多種與植物生長發(fā)育相關(guān)的順式作用元件,例如光和逆境響應(yīng)元件。進(jìn)化分析結(jié)果表明,CsCesA1和CsCesA6可能參與次生細(xì)胞壁的合成,而CsCesA7和CsCesA8可能參與初生細(xì)胞壁的合成,從而影響植物的生長發(fā)育進(jìn)程。
擴(kuò)展蛋白(Expansin)通過調(diào)節(jié)植物細(xì)胞壁各組分之間的松馳度以及增強(qiáng)植物細(xì)胞壁的柔韌性,對植物的生長發(fā)育和環(huán)境抗性產(chǎn)生影響。大麻基因組中鑒定出32個擴(kuò)展蛋白基因,這些基因分布在9條染色體上,并被分為EXPA、EXPB、EXLB和EXLA四個亞家族。這些蛋白質(zhì)的氨基酸數(shù)目在212~471之間,平均等電點(diǎn)為7.48,具有兩個保守結(jié)構(gòu)域,多數(shù)為疏水性蛋白質(zhì)。它們的亞細(xì)胞定位顯示位于細(xì)胞壁上,其啟動子區(qū)域包含多種與植物生長相關(guān)的順式作用元件,如光響應(yīng)元件、種子特異性調(diào)控元件、根特異性調(diào)控元件和玉米醇溶蛋白代謝調(diào)控作用元件,表明它們在植物的生長發(fā)育過程中發(fā)揮著重要作用。
3開花過程中的生物信息學(xué)分析
CONSTANS-like (COL)基因家族在大麻的開花調(diào)控中扮演著關(guān)鍵角色。研究人員(Pan et al., 2021)成功鑒定出大麻基因組中的13個CsCOL基因,這些基因的蛋白長度在184~507氨基酸之間變化。通過系統(tǒng)發(fā)育分析,發(fā)現(xiàn)CsCOL蛋白可以分為3個亞群,并且它們都包含著保守的內(nèi)含子/外顯子結(jié)構(gòu)。這13個CsCOL基因分布不均勻,分布在大麻的7條染色體上,其中第10號染色體上有最多的成員。這些基因的表達(dá)模式顯示,有10個CsCOL基因在葉片中優(yōu)先表達(dá),1個在莖中優(yōu)先表達(dá),而另外2個在雌花中表達(dá)較高。對于光周期的調(diào)控,大多數(shù)CsCOL基因表現(xiàn)出晝夜波動。在短日照處理下,CsCOL3在黑暗結(jié)束時表達(dá)量較高,而在長日照處理下,CsCOL7在白天12時達(dá)到峰值。進(jìn)一步的序列分析表明,CsCOL3和CsCOL7在早花品種和晚花品種中存在氨基酸差異,這使它們在光周期調(diào)控的開花途徑中發(fā)揮著調(diào)節(jié)作用。
磷脂酰乙醇胺結(jié)合蛋白(phosphatidylethanolamine binding protein, PEBP)對于植物的生長發(fā)育,特別是營養(yǎng)生長向生殖生長的過渡,以及芽的生長和花結(jié)構(gòu)的形態(tài)變化具有重要作用。陳晗等(2022)的研究對大麻基因組進(jìn)行了全面的鑒定,共鑒定出12個PEBP基因,分布在大麻的7條染色體上。這些基因都含有2個外顯子,蛋白質(zhì)長度在172~190個氨基酸之間變化,都屬于親水性蛋白。亞細(xì)胞定位分析顯示這些基因均位于細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中。系統(tǒng)進(jìn)化分析將它們分為三個亞家族,具有高度保守性。這些基因的啟動子區(qū)域富含光響應(yīng)元件、脫落酸響應(yīng)元件和茉莉酸響應(yīng)元件等。當(dāng)大麻受到外界脅迫時,這一基因家族可以調(diào)控植物的生長和開花。
MADS-box基因是一類能夠調(diào)控植物生長發(fā)育和信號傳導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄因子,在花器官發(fā)育、開花時間的調(diào)節(jié)以及成花誘導(dǎo)中發(fā)揮著重要作用。大麻基因組中鑒定出了39個MIKC型MADS-box基因(CsMADS),它們的編碼氨基酸數(shù)量在146~503之間,分布在大麻的9條染色體上,均定位于細(xì)胞核內(nèi)。這些基因包含MADS的保守結(jié)構(gòu)域,外顯子的數(shù)量相對保守,大多在6~8之間。系統(tǒng)進(jìn)化分析將它們分為14個亞類。在啟動子區(qū)域中,這些基因含有豐富的光響應(yīng)元件和脫落酸元件。不同組織中,CsMADS基因表現(xiàn)出特異性表達(dá),參與了大麻花器官的發(fā)育。CsMADS7、CsMADS12和CsMADS29在雌花和苞片中的表達(dá)顯著高于葉和莖,促進(jìn)了雌花苞片表面的腺毛發(fā)育,從而有利于提高富含大麻素和萜類物質(zhì)的樹脂的生物合成和儲存(萬志庭等, 2021)。
YABBY轉(zhuǎn)錄因子通過調(diào)控植物側(cè)生器官遠(yuǎn)軸面細(xì)胞的分化,從而影響花和葉器官的生長。在大麻中,已成功鑒定出6個YABBY家族成員(CsYABBY)。這些基因的編碼氨基酸數(shù)量在185~235之間,分布在大麻的5條染色體上。所有這些蛋白都屬于親水性蛋白,含有2個保守的結(jié)構(gòu)域,而內(nèi)含子數(shù)量大多為6個。這些基因的啟動子區(qū)域富含光響應(yīng)元件和激素類響應(yīng)元件。數(shù)據(jù)庫和轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析表明,除了CsYABBY5之外,其他基因在花中的表達(dá)量明顯高于葉片,其中CsYABBY4在花中表達(dá)最高,具有明顯的組織特異性,并且對大麻雌花的發(fā)育起著重要的調(diào)控作用(孫嘉瑩等, 2021)。
4生長發(fā)育中的生物信息學(xué)
植物特異性同源域拉鏈家族(HD-ZIP)轉(zhuǎn)錄因子在植物的發(fā)育和環(huán)境適應(yīng)中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。其中,HD-ZIP轉(zhuǎn)錄因子IV (HDZ IV)主要調(diào)控植物表皮結(jié)構(gòu)的發(fā)育,如氣孔和毛狀體。最近的研究(Ma et al., 2022)在大麻中鑒定了9個編碼HDZ IV的基因,這些基因分布在大麻的5條染色體上,編碼的蛋白質(zhì)包含HDZ IV轉(zhuǎn)錄因子的保守結(jié)構(gòu)域,蛋白質(zhì)長度在737~841個氨基酸之間變化。亞細(xì)胞定位預(yù)測表明,這些蛋白質(zhì)位于細(xì)胞核中。所有已鑒定的大麻HDZ IV基因的啟動子序列都包含多種調(diào)控基序,如光和激素反應(yīng)元件等。此外,不同的HDZ IV基因在根、莖、葉和花等組織中表現(xiàn)出不同的表達(dá)模式,其中CsHDG5 (XP_030501222.1)的表達(dá)與花的成熟度相關(guān)。
壁相關(guān)激酶(Wall-Associated Kinases, WAKs)是一類受體蛋白,它們能夠結(jié)合細(xì)胞壁上的果膠或果膠小片段,參與植物細(xì)胞伸長和對病原體的反應(yīng)。最新的研究(Sipahi et al., 2022)在大麻基因組中鑒定出53個CsWAK/CsWAKL (WAK-like)蛋白家族成員,這些蛋白質(zhì)的氨基酸長度在582~983之間,分子量在65.6~108.8 kDa之間。根據(jù)系統(tǒng)發(fā)育樹的分析,它們可以分為四個類群,分布在大麻的6條染色體上。這些基因的啟動子區(qū)域包含多種調(diào)控元件,涵蓋了光響應(yīng)、發(fā)育、環(huán)境應(yīng)激和激素反應(yīng)等不同的元件。特別值得注意的是,一些候選基因如CsWAK1、CsWAK4、CsWAK7、CsWAKL1和CsWAKL7在葉片組織中顯示出特異的表達(dá)模式。
B3轉(zhuǎn)錄因子家族在植物種子的生長、發(fā)育和抗脅迫過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用。最近的研究(Lu et al., 2022)對大麻中的B3基因家族進(jìn)行了鑒定和分析。大麻B3家族總共包含65個成員,分布在10條染色體上,其等電點(diǎn)在10.03~4.65之間,分子量在99542.88~14310.9Da之間變化。大多數(shù)成員的亞細(xì)胞定位在細(xì)胞核中。這些基因的上游啟動子區(qū)域含有多種與脅迫反應(yīng)相關(guān)的順式作用元件。CsB3基因在不同器官和不同類型的大麻雌性花序中表達(dá)呈現(xiàn)出差異,表明激素和外部環(huán)境因素可能影響CsB3的表達(dá)。其中,一些基因如CsB3-02、CsB3-07、CsB3-50、CsB3-62和CsB3-65可能參與大麻的生長發(fā)育,并在次生代謝產(chǎn)物的合成中發(fā)揮作用。
C2H2型轉(zhuǎn)錄因子在植物的次生代謝和生長發(fā)育中發(fā)揮重要作用。大麻中鑒定出30個C2H2基因家族成員,它們分布不均勻在大麻的9條染色體上,氨基酸數(shù)量在138~635之間。通過系統(tǒng)進(jìn)化分析,這些基因被分為10個亞家族,并且與擬南芥存在同源關(guān)系。這些基因家族成員中光響應(yīng)元件數(shù)量最多,同時還包含脫落酸、赤霉素等作用元件。它們在不同的組織中表現(xiàn)出特異性表達(dá),通過對Diku品種(Dinamed Kush CBD Autoflowering)的實(shí)時熒光定量PCR驗(yàn)證,結(jié)果顯示CsC2H2-1、CsC2H2-5和CsC2H2-19在苞片中表達(dá)量最高,表明它們在大麻的生命活動過程中可能是關(guān)鍵的轉(zhuǎn)錄因子。而CsC2H2-24則在葉片中表達(dá)特異性,表明該基因主要調(diào)控葉片的生長發(fā)育(劉美琦等, 2021)。
熱激蛋白(Hsp20)在應(yīng)對非生物脅迫以及植物的發(fā)育過程中發(fā)揮著作用。研究人員成功地從大麻中鑒定出35個CsHsp20家族成員,這些蛋白的氨基酸長度在133~324之間,平均等電點(diǎn)為6.45。這些蛋白大多數(shù)定位在細(xì)胞質(zhì)中,分布在大麻的9條染色體上,并被分為10個亞家族。它們的啟動子區(qū)域包含多種激素等作用元件,表明它們可能參與大麻的生長發(fā)育。這些基因的表達(dá)水平在不同的組織中表現(xiàn)出特異性,尤其在大麻仁成熟期時,它們的表達(dá)量較高。
5脅迫與次生代謝
bZIP (Basic Leucine Zipper)基因家族在植物的生物和非生物脅迫響應(yīng)以及次生代謝中扮演著重要角色。Lu等(2022)共同鑒定了51個大麻bZIP基因家族成員,這些蛋白的長度在134~572之間,分別編號為CsbZIP1~CsbZIP51,它們分布在大麻的10條染色體上。通過系統(tǒng)發(fā)育分析,這些基因被歸為11個亞家族。同一亞家族的CsbZIPs具有相似的內(nèi)含子/外顯子結(jié)構(gòu)。這些基因的啟動子區(qū)域包含多種調(diào)控元素,如脫落酸響應(yīng)元件、厭氧誘導(dǎo)元件和茉莉酸甲酯響應(yīng)元件等。通過qRT-PCR測定CsbZIPs在不同組織中的表達(dá)水平,研究結(jié)果表明CsbZIP2和CsbZIP8在花、苞片和葉片中的表達(dá)量高于莖和種子,CsbZIP3在莖中表達(dá)水平較高,而CsbZIP15、CsbZIP25、CsbZIP32、CsbZIP34和CsbZIP40等5個基因在苞片中表現(xiàn)出較高的表達(dá)水平,CsbZIP14和CsbZIP23在葉片中相對高表達(dá)。這些結(jié)果與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)一致,有望為培育高大麻二酚和低四氫大麻酚大麻的優(yōu)質(zhì)品種提供指導(dǎo)。
另一項(xiàng)研究揭示了大麻bZIP基因家族成員的調(diào)控作用,特別是它們對植物油脂代謝的調(diào)控(懷浩等, 2022a; 2022b)。二酰基甘油?;D(zhuǎn)移酶(DGAT)家族的成員在植物中催化三酰基甘油的生物合成中起著關(guān)鍵作用。研究人員對大麻DGAT (CsDGAT)基因家族進(jìn)行了詳細(xì)分析(Yan et al., 2023)。他們將10個DGAT候選基因根據(jù)不同亞型特征分為4個家族(DGAT1, DGAT2, DGAT3, WS/DGAT)。這些蛋白的長度在327~556之間,分布在大麻的10條染色體上。CsDGAT家族成員的啟動子區(qū)域包含大量調(diào)控元素,包括植物激素響應(yīng)元件、光響應(yīng)元件和脅迫響應(yīng)元件等。這些基因在植物發(fā)育、環(huán)境適應(yīng)以及非生物脅迫響應(yīng)等關(guān)鍵過程中發(fā)揮重要作用。在低溫脅迫條件下(4℃),CsDGAT基因在大麻幼苗的根和葉片中表達(dá)模式發(fā)生了變化。與未經(jīng)處理的植株相比,幼苗的葉片中CsDGAT1、CsDGAT2和CsDGAT3基因在中后期顯著上調(diào)(上調(diào)幅度大于2倍)。這種表達(dá)模式在根和葉組織中都是一致的,表明這些基因可能在大麻對低溫的響應(yīng)中起著正向調(diào)節(jié)作用。
GRAS (GAI, RGA, SCR)轉(zhuǎn)錄因子家族參與了植物的生長發(fā)育、逆境脅迫和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等過程。一項(xiàng)研究(張苗苗等, 2021)對大麻中的GRAS基因進(jìn)行了鑒定,共鑒定得到44個GRAS基因,它們分布在大麻的10條染色體上,氨基酸數(shù)量在436~757之間。這些基因的序列具有高度保守性,并且主要定位在細(xì)胞核中。通過系統(tǒng)發(fā)育分析,這些基因被分為10個亞家族。它們的啟動子區(qū)域含有脫落酸、茉莉酸甲酯等多種調(diào)控元素。CsGRAS基因在組織和品種中表現(xiàn)出明顯的特異性。CsGRAS4、CsGRAS13、CsGRAS15、CsGRAS17和CsGRAS44可能參與大麻對逆境脅迫以及大麻素生物合成的調(diào)控。
2C類蛋白磷酸酶(PP2C)在植物的代謝產(chǎn)物合成和多種脅迫響應(yīng)中發(fā)揮著調(diào)控作用。對工業(yè)大麻的PP2C基因家族進(jìn)行鑒定后,共鑒定到52個CsPP2C基因,這些蛋白的長度在244~1 089之間,主要定位在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中,且均含有2個以上的內(nèi)含子。通過系統(tǒng)進(jìn)化分析,這52個基因被分為10個亞家族,它們在進(jìn)化上非常保守。這些基因的啟動子區(qū)域包含脫落酸等順式作用元件。它們在不同的組織中表現(xiàn)出差異的表達(dá)模式,例如,CsPP2C21在種子中表達(dá)水平較高,而CsPP2C41在苞片中表達(dá)較高(蔡曉雪等, 2022)。這些研究結(jié)果為深入理解大麻在脅迫響應(yīng)和次生代謝中的分子機(jī)制提供了重要的信息。
6大麻素的合成
萜烯是大麻的氣味和風(fēng)味的主要來源,也直接或間接地影響著使用者的體驗(yàn)。一項(xiàng)研究(Allen et al., 2019)對大麻中的55個萜烯合成酶(TPS)基因進(jìn)行了分析。從外顯子結(jié)構(gòu)來看,TPS家族表現(xiàn)出高度的保守性,被分為TPS-a、TPS-b和TPS-c三個亞家族,分別編碼倍半萜、單萜和二萜合酶?;诮M織特異性的基因表達(dá)分析,約45%的TPS基因在花部樣本中表達(dá),約10%在根部表達(dá)。其中,TPS1、TPS5、TPS18、TPS7和TPS14等基因占TPS基因總表達(dá)量的70%,這些基因編碼的酶參與合成D-檸檬烯、β-月桂烯和γ-桉葉油醇等萜烯物質(zhì)。β-辛烯合成酶TPS6則是TPS-b亞家族中的一個根特異性合成酶,對培育特定萜烯品種具有重要的農(nóng)藝意義,因此對TPS基因家族的深入了解對于大麻素合成具有重要意義。
組蛋白脫乙酰酶(HDACs)在植物生物學(xué)中扮演至關(guān)重要的角色,涉及脅迫響應(yīng)、發(fā)育、生長以及次生代謝產(chǎn)物的生物合成調(diào)控。一項(xiàng)研究(Yang et al., 2021)挖掘了大麻中的14個CsHDAC基因。這些基因的蛋白長度在203~504之間,分布在6條染色體上,被分為RPD3/HDA1、SIR2和HD2三個相對保守的亞家族。每個亞家族內(nèi)外顯子的數(shù)量相似,而每個家族成員的啟動子區(qū)域都包含多個響應(yīng)元件。例如,HDAC9含有許多光響應(yīng)元件,可能對光刺激非常敏感。通過蛋白抑制劑Trichostatin A(TSA)的處理,可以有效抑制大麻中除了CsHDA10之外的所有CsHDAC基因的表達(dá),這可能影響了大麻素代謝途徑中前體物質(zhì)的積累。
大麻二酚(CBD)的合成前體物質(zhì)是大麻二酚酸(CBDA),而CBDA的關(guān)鍵合成酶是大麻二酚酸合成酶(CBDAS),主要由CBDAS基因編碼。潘根等(2021)鑒定了大麻CBDAS基因家族的5個成員,分布在2號和7號染色體上。這些基因在氨基酸數(shù)量上相近,系統(tǒng)進(jìn)化分析顯示它們大多屬于同一個亞家族。這些基因的啟動子區(qū)域包含光響應(yīng)元件等調(diào)控元素。這些CBDAS基因在不同組織中表現(xiàn)出明顯的特異性表達(dá)。CsCBDAS1和CsCBDAS2在雌蕊中表達(dá)較高,而CsCBDAS4和CsCBDAS5在根中表達(dá)較高。這些基因家族也在受到重金屬和光照等條件處理時表現(xiàn)出差異的表達(dá)水平,這些結(jié)果表明CBDAS基因家族參與了大麻素的合成以及大麻的生長發(fā)育。
LBD (Lateral organ boundaries)基因家族不僅調(diào)節(jié)植物的側(cè)根和花序發(fā)育,還參與次生代謝的調(diào)控,是一種植物特有的轉(zhuǎn)錄因子家族。對大麻中的LBD基因家族的鑒定共得到了32個基因,這些基因的氨基酸數(shù)量在172~356之間。大多數(shù)基因定位在細(xì)胞核中,分布在大麻的10條染色體上,基因的結(jié)構(gòu)相對保守。通過系統(tǒng)進(jìn)化分析,這些基因可以分為7個亞家族。它們的啟動子區(qū)域包含了激素等相關(guān)的作用元件。這些基因在不同組織中表現(xiàn)出不同的表達(dá)模式,花和莖中的表達(dá)較多,而葉片中的表達(dá)較少。其中,CsLBD21和CsLBD23在花和莖中表達(dá),而CsLBD8和CsLBD18在花、莖和葉中都有表達(dá)。這些基因家族參與了大麻的生長發(fā)育,從而影響了大麻素的合成(王震等, 2020)。
TIFY基因家族也在大麻中得到了鑒定,共鑒定到14個成員(CsTIFY1~CsTIFY14),它們的氨基酸數(shù)量在118~442之間。這些基因分布在8條染色體上,亞細(xì)胞定位顯示它們都定位在細(xì)胞核中。這些基因包含2~10個內(nèi)含子,通過系統(tǒng)發(fā)育分析,可以將它們分為4個亞家族:JAZ、ZML、TIFY和PPD。這些基因的啟動子區(qū)域含有茉莉酸甲酯、低溫等多種作用元件。它們在不同組織中表現(xiàn)出特異性的表達(dá),例如,CsTIFY6在花、葉和苞片中表達(dá)較高,而CsTIFY1在莖中表達(dá)較高。這些基因的表達(dá)也受到不同品種和環(huán)境條件的影響。特別是TIFY轉(zhuǎn)錄因子家族的JAZ蛋白在大麻素生物合成中可能起著重要的調(diào)控作用,因?yàn)樗鼈儏⑴c了茉莉酸信號通路的調(diào)節(jié),影響了植物次生代謝產(chǎn)物的積累(溫東等, 2020)。
7黃酮醇合成分析
類黃酮化合物不僅對于植物生長和應(yīng)對逆境脅迫至關(guān)重要,還在人類飲食和健康中扮演重要角色。最近的研究由Zhu等(2022)從大麻中鑒定了11類編碼關(guān)鍵酶的基因,共包括56個基因,這些基因參與了黃酮類化合物的生物合成,其中包括CsPAL1-7、CsC4H1-2、Cs4CL1-6、CsCHS1-7、CsCHI1-4、CsFNS1-8、CsF3'H1-3、CsOMT6、CsOMT12、CsOMT21、CsPT1-8、CsF3H1-3和CsFLS1-5。黃酮醇合成酶(Flavonoids Synthase, FLS)屬于2-氧谷氨酸依賴的雙加氧酶(2-ODD)超家族,它們催化二氫黃酮生成黃酮醇。這些酶的蛋白長度在332~364之間,亞細(xì)胞定位顯示它們位于細(xì)胞質(zhì)中,分布在3條染色體上。體外重組蛋白活性分析表明,CsFLS2和CsFLS3具有將柚皮素轉(zhuǎn)化為二氫山奈酚以及將二氫黃酮醇轉(zhuǎn)化為黃酮醇的雙重功能。同時,當(dāng)以柚皮素為底物時,CsFLS2不僅產(chǎn)生了二氫山奈酚和山奈酚,還生成了芹黃素,這表明CsFLS2在大麻中與黃酮合成酶I有著密切的進(jìn)化關(guān)系。
轉(zhuǎn)錄因子家族,包括bHLH和MYB亞家族成員,對植物次生代謝途徑的調(diào)控至關(guān)重要。Bassolino等(2020)首次進(jìn)行了大麻中bHLH和MYB家族的全基因組分析。CsbHLH蛋白家族中有9個基因是單外顯子,11個基因是單內(nèi)含子,其余基因平均共用5個內(nèi)含子。所有CsbHLH蛋白都具有高度保守的基序,通過Pfam分析,鑒定出了保守的PF14215.6特征,其中包括CsbHLH111-121,這表明這些bHLH蛋白可能參與了苯丙類化合物的合成調(diào)控。CsbHLH112、CsbHLH113和CsbHLH114與已知的與黃酮類相關(guān)的bHLH蛋白具有高度同源性,已被證明通過參與MYB-bHLH-WD40調(diào)控復(fù)合物的形成來調(diào)節(jié)花青素合成。此外,研究還發(fā)現(xiàn)了導(dǎo)致大麻類黃酮和大麻素合成的關(guān)鍵代謝途徑的候選調(diào)控基因,如CsMYB82、CsMYB87、CsMYB45和CsMYB39。此外,通過候選基因方法,還鑒定了編碼結(jié)構(gòu)酶的基因,這些酶參與了黃酮類化合物和大麻素的合成。
8其他方面
大麻同其他栽培植物一樣,會受到各種威脅,包括白粉病等真菌性疾病,這些疾病可能降低大麻花蕾的質(zhì)量,給農(nóng)業(yè)經(jīng)濟(jì)帶來嚴(yán)重?fù)p失。白粉病通常與Mildew Locus O (MLO)基因家族的分支IV和V相關(guān),這些基因分別與單子葉和雙子葉植物的白粉病易感性有關(guān)。研究人員在五個不同品種的大麻基因組中鑒定了MLO基因家族的成員,數(shù)量在14、17、19、18和18之間變化。該基因家族包含7個跨膜結(jié)構(gòu)域、完整的MLO功能結(jié)構(gòu)域以及特定的氨基酸位置。通過系統(tǒng)發(fā)育分析,確定了七個不同的進(jìn)化分支(I~VII),研究人員從中篩選出白粉病易感性的候選基因,為培育抗白粉病的大麻品種提供了有力的依據(jù)(Pépin et al., 2021)。
大麻籽中含有豐富的11S球蛋白(edestin),這是大麻籽中含量最高的蛋白質(zhì)之一,其兩個亞基的分子量分別在20~35 kDa之間。其次是2S白蛋白(Cs2S),其分子量約為14~15 kDa,而蛋白質(zhì)豐度最低的是7S類鄰近蛋白(Cs7S),其分子量約為47 kDa。研究人員對編碼這三種貯藏蛋白的基因家族進(jìn)行了分析,其中包括3個edestin基因、2個Cs2S基因和1個Cs7S基因。通過氨基酸組成和結(jié)構(gòu)分析,發(fā)現(xiàn)Edestin 1編碼的蛋白具有最高的分子量,而Edestin 2編碼的蛋白具有最小的分子量。這三種蛋白都富含精氨酸,而Edestin 3的蛋白則含有更高比例的蛋氨酸,這表明Edestin 3在營養(yǎng)價值方面具有優(yōu)勢。此外,不同品種的大麻在氨基酸組成和營養(yǎng)品質(zhì)方面存在差異,這有助于進(jìn)一步優(yōu)化大麻品種的營養(yǎng)特性(Sun et al., 2021)。在另一項(xiàng)研究中,研究人員從大麻品種Carmagnola中分離出7個編碼球蛋白的序列,這兩種類型的球蛋白都表現(xiàn)出球蛋白的特征。這兩種edestin基因在大麻種子的發(fā)育過程中都有表達(dá),因此可以用于改善植物性食品的營養(yǎng)品質(zhì)(Docimo et al., 2014)。
9總結(jié)與展望
本研究深入探討了大麻基因家族的鑒定和生物信息學(xué)分析技術(shù)的應(yīng)用,涵蓋了多個關(guān)鍵領(lǐng)域,包括纖維、開花、生長發(fā)育、脅迫及次生代謝、大麻素合成和黃酮醇合成等。這些研究不僅可以更清晰地了解了大麻的基因組成和多樣性,還為深入理解大麻的生物學(xué)功能和潛在應(yīng)用提供了基礎(chǔ)。本研究僅僅是大麻基因家族研究的一個起點(diǎn)。進(jìn)一步加強(qiáng)對已鑒定的基因家族成員的研究,包括基因功能的驗(yàn)證和解析。這可以通過基因過表達(dá)、基因沉默以及蛋白質(zhì)相互作用研究等方法來實(shí)現(xiàn),以深入了解這些基因在大麻植物的生長、發(fā)育和次生代謝中的具體作用。
大麻基因組仍然存在許多未知的領(lǐng)域,需要進(jìn)一步挖掘。尋找并鑒定新的基因家族以及其成員,這將有助于擴(kuò)展對大麻遺傳多樣性的理解。這些新發(fā)現(xiàn)的基因家族可能具有重要的功能,可以為大麻分子育種和優(yōu)良品種選育提供更多的潛在目標(biāo)。本研究為大麻基因家族的鑒定和生物信息學(xué)分析技術(shù)的應(yīng)用提供了有力支持,未來的工作將在這一基礎(chǔ)上不斷深入,推動大麻研究領(lǐng)域的進(jìn)一步發(fā)展。大麻的科學(xué)研究將有望為農(nóng)業(yè)、醫(yī)學(xué)、工業(yè)等領(lǐng)域的應(yīng)用提供更多可能性,為人類福祉和健康做出更多貢獻(xiàn)。
參考文獻(xiàn)
[1] Allen K.D., Mckernan K., Pauli C., Roe J., Torres A., and Gaudino R., 2019, Genomic characterization of the complete terpene synthase gene family fromCannabis Sativa, Plos One, 14(9): e222363.
[2] Bassolino L., Buti M., Fulvio F., Pennesi A., Mandolino G., Milc J., Francia E., and Paris R., 2020, In Silico Identification of Myb and Bhlh Families Reveals Candidate Transcription Factors for Secondary Metabolic Pathways inCannabis Sativa L., Plants, 9(11): 1540.
[3] Cai X.X., Wang S.F., Mi Y.L., Wan H.H., Cao X., Sun W., Su C., Chen S.L., Xu Y.Q., and Chen W.Q., 2022, Identification and Expression Analysis of PP2C Gene Family Members inCannabis sativa, Zhongguo Shiyan Fangjixue Zazhi (Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae), 28(19): 162-172. (蔡曉雪, 王思凡, 米要磊, 萬會花, 曹雪, 孫偉, 蘇暢, 陳士林, 徐艷琴, 陳偉強(qiáng), 2022, 工業(yè)大麻PP2C基因家族成員鑒定及表達(dá)分析, 中國實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志, 28(19): 162-172.)
[4] Chen H., Xu H.G., Wang Z.G., Xu W.H, Ge X.Q., and Qi H.Y., 2022, Identification and bioinformatics of PEBP family in Hemp, Fujian Nongye Xuebao (Fujian Journal of Agricultural Sciences), 37(8): 1016-1024. (陳晗, 徐洪國, 王志剛, 徐偉慧, 葛宵啟, 祁宏英, 2022, 大麻PEBP基因家族鑒定及生物信息學(xué)分析, 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 37(8): 1016-1024.)
[5] Docimo T., Caruso I., Ponzoni E., Mattana M., and Galasso I., 2014, Molecular characterization of edestin gene family inCannabis Sativa L., Plant Physiology and Biochemistry, 84: 142-148.
[6] Gao S., Wang B.S., Xie S.S., Xu X.Y., Zhang J., Pei L., Yu Y.Y., Yang W.F., and Zhang Y., 2020, A high-quality reference genome of wildCannabis Sativa, Horticulture Research, 7(1): 73.
[7] Guerriero G., Deshmukh R., Sonah H., Sergeant K., Hausman J., Lentzen E., Valle N., Siddiqui K.S., and Exley C., 2019, Identification of the Aquaporin Gene Family inCannabis Sativa and Evidence for the Accumulation of Silicon in its Tissues, Plant Science, 287: 110167.
[8] Guerriero G., Mangeot-Peter L., Legay S., Behr M., Lutts S., Siddiqui K.S., and Hausman J., 2017, Identification of Fasciclin-Like Arabinogalactan proteins in Textile Hemp (Cannabis Sativa L.): In Silico analyses and gene expression patterns in different tissues, BMC Genomics, 18(1): 741.
[9] Huai H., Dong L.L., Ning K., Hou C., Dai F., Liu X., Wang J.Z., and Chen S.L., 2022a, Genome-wide identification of the Hsp20 gene family inCannabis sativa and its expression profile, Yaoxue Xuebao (Acta Pharmaceutica Sinica), 57(4): 1203-1215. (懷浩, 董林林, 寧康, 侯聰, 代飛, 劉霞, 汪鋆植, 陳士林, 2022a, 中藥火麻仁基原植物Hsp20基因家族鑒定及表達(dá)分析, 藥學(xué)學(xué)報(bào), 57(4): 1203-1215.)
[10] Huai H., Ning K., Hou C., Yang S.M., Wang J.Z., Chen S.L., and Dong L.L., 2022b, The identification of bZIP gene family inCannabis sativa L.and its preliminary research of the function in regulation of lipid metabolism, Yaoxue Xuebao (Acta Pharmaceutica Sinica), 57(8): 2528-2542. (懷浩, 寧康, 侯聰, 楊樹明, 汪鋆植, 陳士林, 董林林, 2022b, 火麻仁基原植物bZIP基因家族鑒定及其調(diào)控油脂代謝的功能初探, 藥學(xué)學(xué)報(bào), 57(8): 2528-2542.)
[11] Irakli M., Tsaliki E., Kalivas A., Kleisiaris F., Sarrou E., and Cook C.M., 2019, Effect of genotype and growing year on the nutritional, phytochemical, and antioxidant properties of industrial Hemp (Cannabis Sativa L.) Seeds, Antioxidants (Basel), 8(10): 491.
[12] Liu M.Q., Sun W., Meng X.X., Wan H.H., Liu T.X., Sun J.Y., Wang Z., Mi Y.L., and Ma W., 2021, Identification and expression analysis of the C2H2 gene family in Cannabis sativa L., Yaoxue Xuebao (Acta Pharmaceutica Sinica), 56(5): 1486-1496. (劉美琦, 孫偉, 孟祥霄, 萬會花, 劉廷霞, 孫嘉瑩, 王震, 米要磊, 馬偉, 2021, 藥用植物大麻C2H2基因家族鑒定與表達(dá)分析, 藥學(xué)學(xué)報(bào), 56(5): 1486-1496)
[13] Long T.W., Wagner M., Demske D., Leipe C., and Tarasov P.E., 2017, Cannabis in eurasia: origin of human use and bronze age trans-continental connections, Vegetation History and Archaeobotany, 26: 245-258
[14] Lu J.X., Sun J.Y., Wang Z., Ren W.C., Xing N.N., Liu M.Q., Zhang Z.P., Kong L.Y., Su X.Y., Liu X.B., and Ma W., 2022a, In silico genome-wide analysis of B3 transcription factors inCannabis Sativa L., Cannabis and Cannabinoid Research, 13: 168.
[15] Lu M., Meng X.X., Zhang Y.M., Zhu X.W., Li J., Chen W.Q., Wan H.H., Wang S.F., Cao X., Sun W., Mi Y.L., and Zhai J.W., 2022b, Genome-wide identification and expression profiles of Bzip Genes inCannabis Sativa L., Cannabis and Cannabinoid Research, 7(6): 882-895
[16] Ma G., Zelman A.K., Apicella P.V., and Berkowitz G., 2022, Genome-Wide Identification and Expression Analysis of Homeodomain Leucine Zipper Subfamily Iv (Hd-Zip Iv) Gene Family inCannabis Sativa L., Plants, 11(10): 1307.
[17] Pan G., Li Z., Yin M., Huang S., Tao J., Chen A., Li J., Tang H., Chang L., Deng Y., Li D., and Zhao L., 2021, Genome-wide identification, expression, and sequence analysis of constans-like gene family in cannabis reveals a potential role in plant flowering time regulation, BMC Plant Biology, 21: 142.
[18] Pan G., Tao J., Nie R., Zhou B., Huang S.Q., Chen A.G., Li J.J., Tang H.J., Li D.F., and Zhao L.N., 2021, Genome-Wide Identification and Expression Analysis of the CBDAS Cannabidiolic Acid Synthase Gene Family inCannabis sativa L., Hubei Nongxuebao (Acta Agriculturae Boreali-Sinica), 36(z1): 1-7. (潘根, 陶杰, 聶榮, 周兵, 黃思齊, 陳安國, 李建軍, 唐慧娟, 李德芳, 趙立寧, 2021, 大麻CBDAS基因家族成員的全基因組鑒定及表達(dá)分析, 華北農(nóng)學(xué)報(bào), 36(z1): 1-7.)
[19] Pépin N., Hebert F.O., and Joly D.L., 2021, Genome-wide characterization of the Mlo gene family in Cannabis Sativa reveals two genes as strong candidates for powdery mildew susceptibility, Frontiers in Plant Science, 12: 729621.
[20] Piluzza G., Delogu G., Cabras A., Marceddu S., and Bullitta S., 2013, Differentiation Between Fiber and Drug Types of Hemp (Cannabis Sativa L.) From a Collection of Wild and Domesticated Accessions, Genetic Resources and Crop Evolution, 60(8): 2331-2342
[21] Sipahi H., Whyte T.D., Ma G., and Berkowitz G., 2022, Genome-Wide Identification and Expression Analysis of Wall-Associated Kinase (Wak) Gene Family inCannabis Sativa L., Plants, 11(20): 2703
[22] Sun J.Y., Wang Z., Mi Y.L., Meng X.X., Wan H.H., Yan Y., Sun W., and Ma W., 2021, Analysis on YABBY transcription factor family of original plantCannabis sativa of traditional chinese medicine cannabis fructus, Zhongguo Shiyan Fangjixue Zazhi (Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae), 27(5): 124-131. (孫嘉瑩, 王震, 米要磊, 孟祥霄, 萬會花, 閆赟, 孫偉, 馬偉, 2021, 中藥火麻仁基原植物大麻全基因組YABBY轉(zhuǎn)錄因子分析, 中國實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志, 27(5): 124-131.)
[23] Sun X., Sun Y., Li Y., Wu Q., and Wang L., 2021, Identification and Characterization of the Seed Storage Proteins and Related Genes ofCannabis Sativa L., Frontiers in Nutrition, 8: 678421
[24] Wan Z.T., Lu M., Wu S.S., Mi Y.L., and Zhai J.W., 2021, Identification and expression analysis of the MIKC-type MADS-box gene family inCannabis sativa L., Yaoxue Xuebao (Acta Pharmaceutica Sinica), 56(11): 3173-3183. (萬志庭, 魯夢, 吳沙沙, 米要磊, 翟俊文, 2021, 中藥火麻仁基原植物大麻MIKC型MADS-box基因家族鑒定與表達(dá)分析, 藥學(xué)學(xué)報(bào), 56(11): 3173-3183)
[25] Wang Z., Mi Y.L., Meng X.X., Wan H.H., Ji A.J., Sun W., and Ma W., 2020, Genome-wide analysis of LBD(lateral organ boundaries domain)gene family inCannabis sativa of traditional Chinese medicine hemp seed, Zhongguo Zhongyao Zazhi (China Journal of Chinese Materia Medica), 45(22): 5477-5486. (王震, 米要磊, 孟祥霄, 萬會花, 季愛加, 孫偉, 馬偉, 2020, 中藥火麻仁基原植物大麻LBD基因家族成員的鑒定與表達(dá)分析, 中國中藥雜志, 45(22): 5477-5486.)
[26] Wei H.W, Chen S.Y., Niyitanga S., Liu T., Qi J.M., and Zhang L.W., 2022, Genome-wide identification and expression analysis response to GA3 Stresses of WRKY gene family in seed hemp (Cannabis Sativa L), Gene, 822: 146290
[27] Wen D., Wang M.Y., Mi Y.L., Ma W., Sun W., and Shi Y.H., 2020, Genome-wide Identification and Characterization of TIFY Gene Family in Medicinal PlantCannabis sativa, Zhongguo Shiyan Fangjixue Zazhi (Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae), 26(24): 134-143. (溫東, 王夢月, 米要磊, 馬偉, 孫偉, 師玉華, 2020, 中藥火麻仁基原植物大麻的TIFY基因家族鑒定及功能分析, 中國實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志, 26(24): 134-143.)
[28] Yan B.W., Chang C.Y., Gu Y.N., Zheng N., Fang Y.Y., Zhang M., Wang G.J., and Zhang L.G., 2023, Genome-wide identification, classification, and expression analyses of theCsDGAT gene family in Cannabis Sativa L. and their response to cold treatment, International Journal of Molecular Sciences, 24(4): 4078.
[29] Yang L., Meng X.X., Chen S.L., Li J., Sun W., Chen W.Q., Wang S.F., Wan H.H., Qian G.T., Yi X.Z., Li J.C., Zheng Y.Q., Luo M., Chen S.S., Liu X., and Mi Y., 2021, Identification of the histone deacetylases gene family in hemp reveals genes regulating Cannabinoids Synthesis, Frontiers in Plant Science, 12: 755494.
[30] Zhang L.G., 2022, CsBLH7 interacts with CsKNAT4 proteins to regulate elongation of hypocotyl cells, Jiangsu Nongye Kexue (Jiangsu Agricultural Sciences), 50(6): 41-44. (張利國, 2022, CsBLH7與CsKNAT4蛋白互作調(diào)節(jié)下胚軸細(xì)胞的伸長, 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué), 50(6): 41-44.)
[31] Zhang L.G., 2023, Subcellular localization and transcription activity analysis of CsKNAT3, Fenzi Zhiwu Yuzhong (Molecular Plant Breeding), 21(11): 3568-3571. (張利國, 2023, CsKNAT3亞細(xì)胞定位與轉(zhuǎn)錄活性分析, 分子植物育種, 21(11): 3568-3571.)
[32] Zhang L.G., Zhang X.F., Wang G.J., Zhang S.Q., and Chang Y., 2021, Research on AtATH1 transcription activity and immunoprecipitation analysis of interaction with AtOFP1 Protein, Fenzi Zhiwu Yuzhong (Molecular Plant Breeding), 19(20): 6747-6749. (張利國, 張效霏, 王貴江, 張樹權(quán), 常纓, 2021, AtATH1轉(zhuǎn)錄活性研究及與AtOFP1蛋白互作的免疫共沉淀分析, 分子植物育種, 19(20): 6747-6749.)
[33] Zhang M.M., Yu J.S., Shi J., Yang Y., Meng X., Sun W., Wan H.H., and Xue J.P., 2021, Study on GRAS transcription factors of cannabis genome, Zhongcaoyao (Chinese Traditional and Herbal Drugs), 52(5): 1423-1433. (張苗苗, 于江珊, 施江, 楊雨, 孟雪, 孫偉, 萬會花, 薛建平, 2021, 大麻GRAS轉(zhuǎn)錄因子全基因組研究, 中草藥, 52(5): 1423-1433.)
[34] Zhang X.F., and Zhang L.G., 2022, Research Progress on Male Sterility of Industrial Hemp, Xiandai Nongye Keji (Xiandai Nongye Keji), (8): 73-76. (張效霏, 張利國, 2022, 工業(yè)大麻雄性不育研究進(jìn)展, 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技, (8): 73-76.)
[35] Zhu X..W., Mi Y.L., Meng X.X., Zhang Y.M., Chen W.Q., Cao X.W., Wan H., Yang W., Li J., Wang S.F., Xu Z.C., Wahab A.T., Chen S.L., and Sun W., 2022, Genome-wide identification of key enzyme-encoding genes and the catalytic roles of Two 2-Oxoglutarate-Dependent dioxygenase involved in flavonoid biosynthesis inCannabis Sativa L., Microbial Cell Factories, 21: 215.
文章摘自:隋月,張利國,房郁妍等. 基因家族鑒定技術(shù)在大麻中研究現(xiàn)狀 [J/OL]. 分子植物育種, 1-9[2024-01-31]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20231226.1148.006.html.
