摘 要:本研究以漢麻分離蛋白(Hemp Protein Isolate,HPI)為原料,通過超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)HPI進(jìn)行改性,以溶解度和水解度為判定指標(biāo)篩選酶解改性反應(yīng)最佳條件,并探究超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)酶解產(chǎn)物溶解性、起泡性、乳化性、持水性、持油性的影響。結(jié)果表明,HPI酶解反應(yīng)最適條件為:加酶量(復(fù)合蛋白酶)5000U/g、酶解改性pH8.0、酶解改性溫度55℃、酶解改性時(shí)間50min。以HPI為對(duì)照,當(dāng)壓力為200MPa時(shí),酶解產(chǎn)物的溶解度、起泡性、乳化性、持油性最高,壓力為100MPa時(shí),泡沫穩(wěn)定性最好,酶解后的乳化穩(wěn)定性存在不同程度的下降,壓力為0.1MPa時(shí)其持水性達(dá)到最大值。綜上所述,超高壓技術(shù)能夠有效促進(jìn)HPI的酶解改性反應(yīng),且壓力為200MPa時(shí),酶解產(chǎn)物的理化性質(zhì)最好。
關(guān)鍵詞:漢麻分離蛋白(HPI),超高壓(UHP),酶解,理化性質(zhì)
漢麻(Cannabis sativa L.),又名火麻、大麻等,在我國(guó)是一種傳統(tǒng)的藥食同源桑科植物,由漢麻葉、籽、莖稈等部分組成[1],漢麻籽中富含的漢麻分離蛋白(hemp protein isolate,HPI)氨基酸種類及含量豐富,消化率高且致敏性低,具有增強(qiáng)免疫力、抗疲勞、降血糖、維持腸道菌群平衡等作用,是一種極具價(jià)值的多功效植物蛋白資源[2,3]。但漢麻蛋白質(zhì)溶解度較低,功能性質(zhì)較差[9],導(dǎo)致其難以作為原輔料應(yīng)用于食品及營(yíng)養(yǎng)保健品生產(chǎn)中,因此,有必要通過某些技術(shù)手段改善其功能特性以更好的開發(fā)利用漢麻蛋白,提升其市場(chǎng)競(jìng)爭(zhēng)力。
目前,常用的蛋白質(zhì)改性技術(shù)有物理改性技術(shù)、化學(xué)改性技術(shù)、酶解改性技術(shù)等,其中物理改性技術(shù)如熱處理易產(chǎn)生熱聚集使蛋白質(zhì)的利用率降低,化學(xué)改性技術(shù)會(huì)使得酸堿試劑有殘留,降低蛋白營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,不利于消化吸收。酶解改性技術(shù)主要是指利用蛋白酶在適宜條件下水解蛋白質(zhì)使肽鍵斷裂,導(dǎo)致可電離基團(tuán)數(shù)量增加、被掩蓋的疏水片段暴露,從而改善蛋白質(zhì)的功能性質(zhì)[4]。酶解反應(yīng)過程十分溫和、副產(chǎn)物較少且無毒、蛋白質(zhì)營(yíng)養(yǎng)價(jià)值破壞程度小,改性后蛋白質(zhì)與原始蛋白質(zhì)相比,具有更低的分子量和更好的功能特性。此外,酶解之后產(chǎn)生的多肽還具有一定的生物活性,如降血壓、降血糖、抗氧化活性等,因此酶解改性是改善蛋白質(zhì)功能特性的首選方法[5,6]。但酶解改性同時(shí)也存在酶解過程隨機(jī)、酶利用率低和酶解效率低等問題[10]。故有必要尋找能夠解決酶解反應(yīng)上述問題的技術(shù)方法,從而擴(kuò)大酶解改性技術(shù)的應(yīng)用范圍。
超高壓技術(shù)(Ultra-High Pressure processing,UHP)是指將待處理物品置于高壓腔體中,在一定溫度和時(shí)間范圍內(nèi),以水為介質(zhì)傳遞壓力進(jìn)行高壓(100-1000MPa)處理,使食品中蛋白質(zhì)、多糖等大分子物質(zhì)變性或微生物滅活,以達(dá)到改變理化和功能特性、滅菌保藏、延長(zhǎng)產(chǎn)品保存期等目的[7,8]。故超高壓技術(shù)可促進(jìn)蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變和酶解作用的發(fā)生,從而達(dá)到改善蛋白質(zhì)功能性質(zhì)、提高酶解效率的目的[11]。關(guān)海寧[12]等人利用超高壓協(xié)同酶法制備不同分子量大豆分離蛋白水解肽,其乳化性及抗氧化性均得到顯著提高。
本研究以漢麻分離蛋白酶解改性為支撐點(diǎn),輔助以超高壓技術(shù),著重研究漢麻分離蛋白高效的改性措施,旨在獲得更加優(yōu)質(zhì)的漢麻蛋白質(zhì)產(chǎn)品,為漢麻蛋白產(chǎn)品的深度研發(fā)與應(yīng)用提供相關(guān)的理論指導(dǎo)和技術(shù)支持,對(duì)植物蛋白質(zhì)資源的高值化利用具有深遠(yuǎn)意義。
1 材料與方法
1.1 材料與儀器
漢麻分離蛋白(96%)食品級(jí)黑龍江省大慶市星火牧場(chǎng);復(fù)合蛋白酶(100000U/g桿菌蛋白酶復(fù)合體,主酶是堿性蛋白酶)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;堿性蛋白酶(200000U/g)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;木瓜蛋白酶(100000U/g)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;中性蛋白酶(200000U/g)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;胰蛋白酶(250NFU/mg)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;氫氧化鈉分析純天津凱通化學(xué)試劑有限公司;鹽酸分析純天津凱通化學(xué)試劑有限公司;甲醛溶液分析純寶雞正源化工科技股份有限公司;大豆油食品級(jí)九三糧油工業(yè)集團(tuán)有限公司。
HHP-400超高壓設(shè)備沈陽人和機(jī)電工程設(shè)備有限公司;HH-4型數(shù)顯恒溫水浴鍋金壇市雙捷實(shí)驗(yàn)儀器廠;Sartorius BSA223S型電子天平賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;PHS-3C型pH計(jì)梅特勒-托利多儀器有限公司;DF-1集熱式磁力攪拌器金壇市雙捷實(shí)驗(yàn)儀器廠;T50高速剪切機(jī)德國(guó)IKA公司;721型分光光度計(jì)上海元析儀器有限公司;UVS-4型漩渦振蕩儀濟(jì)南千司生物技術(shù)有限公司;FD5-3型冷凍干燥機(jī)美國(guó)SIM公司。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 漢麻分離蛋白酶解改性工藝
配制50g/L的漢麻蛋白溶液,用1mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)溶液pH至最適值。隨后加入蛋白酶與上述溶液混勻,將此蛋白溶液密封在聚氯乙烯袋中,放入HHP-400超高壓設(shè)備中于不同壓力(0.1~300MPa)下,在設(shè)定溫度中進(jìn)行酶解改性反應(yīng)單因素試驗(yàn),以溶解度及水解度為判定指標(biāo),篩選出最適酶解反應(yīng)條件。水解物經(jīng)FD5-3型冷凍干燥機(jī)進(jìn)行凍干得到蛋白樣品。
1.2.2 酶解反應(yīng)條件篩選單因素試驗(yàn)
1.2.2.1 蛋白酶選擇
選用以下五種蛋白酶分別在各自最適條件下對(duì)漢麻分離蛋白進(jìn)行酶解改性40min,反應(yīng)完成后滅酶處理(85℃水浴30min),測(cè)定其水解度及溶解度以篩選酶解改性反應(yīng)最佳酶制劑。
表1 不同蛋白酶的酶解條件
1.2.2.2加酶量確定
固定改性pH7.5,改性溫度55℃,改性時(shí)間40min,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同加酶量(2000、3000、4000、5000、6000U/g)對(duì)溶解度及水解度的影響。
1.2.2.3酶解改性pH確定
固定改性溫度55℃,改性時(shí)間40min,加酶量5000U/g,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同改性pH(6.5、7.0、7.5、8.0、8.5)對(duì)溶解度及水解度的影響。
1.2.2.4酶解改性溫度確定
固定改性pH8.0,改性時(shí)間40min,加酶量5000U/g,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同改性溫度(45、50、55、60、65℃)對(duì)溶解度及水解度的影響。
1.2.2.5酶解改性時(shí)間確定
固定改性pH8.0,改性溫度55℃,加酶量5000U/g,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同改性時(shí)間(20、30、40、50、60min)對(duì)溶解度及水解度的影響。
1.2.3水解度測(cè)定
參考文獻(xiàn)[13]方法,略有改動(dòng)。取5mL漢麻分離蛋白水解液與60mL蒸餾水于燒杯中混合均勻,用0.05mol/L NaOH標(biāo)液滴定至pH為8.2;加入10mL中性甲醛溶液與上述溶液混勻,再用0.05mol/L NaOH標(biāo)液滴至pH9.2,記錄消耗NaOH的量。將蛋白質(zhì)水解液換成等量蒸餾水作為空白試驗(yàn),總氮含量測(cè)定參考文獻(xiàn)[13]。氨基氮含量及水解度含量計(jì)算公式如下:
式中:X表示氨基氮含量,g/mL;V1表示酶解液加甲醛溶液后滴至pH9.2時(shí)NaOH消耗量,mL;Vo表示空白加甲醛溶液后滴至pH9.2時(shí)NaOH消耗量,mL;V表示取樣體積,mL;C表示NaOH標(biāo)液摩爾濃度,mol/L;0.014表示與1mL NaOH標(biāo)定溶液[CNaOH=1mol/L]相當(dāng)?shù)牡馁|(zhì)量,g;X1表示總氮含量,g/mL。
1.2.4溶解度測(cè)定
參考文獻(xiàn)[14]方法,略有改動(dòng)。稱取0.5g經(jīng)冷凍干燥的蛋白質(zhì)樣品于燒杯中,加入50mL蒸餾水,利用0.5mol/L NaOH溶液和0.5mol/LHCI溶液調(diào)節(jié)溶液pH為2.0-10.0,25℃恒溫?cái)嚢?0min,移入離心管中,4000r/min離心10min后收集上清液,利用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定上清液中蛋白質(zhì)含量,總蛋白含量通過凱氏定氮法測(cè)定。通過以下公式計(jì)算溶解度:
式中:X表示上清液蛋白質(zhì)量,g/mL;X1表示樣品中總蛋白質(zhì)量,g/mL。
1.2.5 起泡性及泡沫穩(wěn)定性測(cè)定
蛋白起泡性(FAI)及泡沫穩(wěn)定性(FSI)測(cè)定參考Agyare[15]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。稱取1g凍干蛋白質(zhì)樣品置于離心管中,加入50mL蒸餾水,記總體積為V0,然后使用高速剪切機(jī)10000r/min均質(zhì)2min,迅速倒入帶有刻度的量筒中,量取總體積記為V1,均質(zhì)停止30min后再次量取總體積,記為V2。利用下列公式計(jì)算起泡性及泡沫穩(wěn)定性:
式中:V0表示起始溶液在量筒中的高度,mL;V1表示經(jīng)高速均質(zhì)后液體總高度,mL;V2表示高速均質(zhì)停止30min后液體總高度,mL。
1.2.6乳化性及乳化穩(wěn)定性測(cè)定
蛋白乳化性(EAI)及乳化穩(wěn)定性(ESI)測(cè)定參考Pearce等人[16]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。配制1%的蛋白質(zhì)樣品溶液與食用大豆油以3:1的比例混勻,使用高速剪切機(jī)10000r/min均質(zhì)2min形成均勻乳狀液,立即吸取100μL,加入5mL 0.1%SDS溶液,500nm處測(cè)定吸光值記為A0,靜置10min后同樣測(cè)定吸光值記為A10。利用下列公式計(jì)算乳化性及乳化穩(wěn)定性:
式中:T表示渾濁度,2.303;C表示蛋白質(zhì)溶液原始濃度,g/mL;Ø表示溶液中油的體積分?jǐn)?shù)(0.25);N表示稀釋倍數(shù);A0表示0min時(shí)的吸光值。
式中:A0表示0min時(shí)的吸光值;A10表示10min時(shí)的吸光值。
1.2.7 持水性測(cè)定
蛋白質(zhì)持水性測(cè)定參考Wang等人[17]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。稱1g凍干蛋白質(zhì)樣品于離心管中,加入30mL蒸餾水于漩渦振蕩儀上振勻,靜置20min后,25℃下離心(6000r/min)10min,對(duì)沉淀樣品稱重,利用下列公式計(jì)算持水性:
式中:W1表示離心后殘留物質(zhì)量,g;W0表示樣品質(zhì)量,g。
1.2.8 持油性測(cè)定
蛋白持油性測(cè)定參考Chen等人[18]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。稱1g凍干蛋白質(zhì)樣品于離心管中,加入10mL大豆油,于漩渦振蕩儀上振勻,25℃下離心(6000r/min)10min,對(duì)沉淀樣品稱重,利用下列公式計(jì)算持油性:
式中:M1表示離心后殘留物質(zhì)量,g;M0表示樣品質(zhì)量,g。
1.3數(shù)據(jù)處理
采用IBM SPSSS tatistics26進(jìn)行顯著性分析(P<0.05);利用Statistic8、Origin 2019 Pro軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析及繪圖,所有實(shí)驗(yàn)組均進(jìn)行三次平行實(shí)驗(yàn)。
2 結(jié)果與分析
2.1 漢麻分離蛋白超高壓輔助酶解反應(yīng)最適條件研究
2.1.1 蛋白酶選擇
本實(shí)驗(yàn)選擇復(fù)合蛋白酶、堿性蛋白酶、木瓜蛋白酶、中性蛋白酶及胰蛋白酶對(duì)漢麻分離蛋白在各自最適酶解pH和溫度下進(jìn)行酶解反應(yīng),以溶解度及水解度為判定標(biāo)準(zhǔn),篩選最佳酶制劑,其結(jié)果如下表2所示。
表2 不同蛋白酶對(duì)HPI改性效果影響
2.1.2加酶量確定
不同加酶量在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖1(a)所示,由圖可知,隨著復(fù)合蛋白酶用量增加,HPI水解產(chǎn)物溶解度逐漸增大,當(dāng)加酶量超過5000U/g時(shí),溶解度稍有下降,可能是隨著酶量增加,酶與底物結(jié)合更加充分,水解反應(yīng)逐漸增強(qiáng),表現(xiàn)為溶解度的上升,而繼續(xù)增加酶量時(shí),酶與蛋白質(zhì)作用會(huì)產(chǎn)生一部分疏水性多肽,而溶解度的下降可能是疏水性多肽的形成引起的[20]。當(dāng)壓力達(dá)到100、200或300MPa時(shí),酶解產(chǎn)物溶解度在不同加酶量下均高于0.1MPa,在200MPa時(shí)具有最大值,可推測(cè)出HPI酶解反應(yīng)在壓力超過200MPa時(shí)受到抑制,是因?yàn)檫m當(dāng)?shù)某邏禾幚硎沟鞍踪|(zhì)構(gòu)象發(fā)生變化,結(jié)構(gòu)變得伸展、暴露更多酶切位點(diǎn),促進(jìn)酶解反應(yīng)進(jìn)行,使可溶性蛋白含量增多,而當(dāng)壓力到達(dá)300MPa時(shí),過高的壓力使蛋白質(zhì)分子間發(fā)生了聚集或者酶活性降低,抑制了酶解反應(yīng)[21],導(dǎo)致溶解度下降。
不同加酶量在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖1(b)所示,由圖可知,HPI水解產(chǎn)物水解度隨酶量增加先明顯上升后緩慢上升,說明酶用量增加可以增大酶解程度[22],但在這個(gè)過程中,蛋白酶逐漸趨向飽和,因此水解度隨后上升緩慢。與溶解度變化趨勢(shì)一致,水解度在200MPa時(shí)達(dá)到最大值。綜上,選擇5000U/g為HPI酶解改性反應(yīng)最適加酶量。
2.1.3 酶解反應(yīng) pH 確定
不同酶解反應(yīng)pH在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖2(a)所示,隨著pH的增加,不同壓力下HPI水解物溶解度均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在pH為8.0時(shí)溶解度達(dá)到最大,原因可能與復(fù)合蛋白酶酶解最佳酸堿環(huán)境有關(guān),當(dāng)pH過大或過小時(shí),會(huì)引起酶構(gòu)象的改變且影響酶分子活性部分上有關(guān)基團(tuán)的解離,導(dǎo)致蛋白酶活性減弱,不利于酶作用于底物使可溶性蛋白質(zhì)產(chǎn)生[23]。壓力影響方面,不同pH下溶解度均在200MPa時(shí)達(dá)到最大值。
不同酶解反應(yīng)pH在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖2(b)所示,當(dāng)壓力為200MPa時(shí)蛋白質(zhì)水解度達(dá)到最大,顯著高于其他壓力條件下的水解度(P<0.05),主要是由于超高壓處理可促進(jìn)酶解反應(yīng)進(jìn)行,有效提高水解效率,而壓力過大則會(huì)減弱酶活性以及對(duì)酶解反應(yīng)起到抑制作用[24],從而使水解度有所降低。當(dāng)pH為8.0時(shí),在不同壓力作用下水解度均達(dá)到最大值。綜上,選擇pH8.0為HPI酶解改性反應(yīng)最佳pH值。
2.1.4 酶解反應(yīng)溫度的確定
不同酶解反應(yīng)溫度在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖3(a)所示,由圖可知,不同溫度下,HPI溶解度均在200MPa時(shí)達(dá)到最大值,較高的壓力反而對(duì)酶解反應(yīng)有抑制作用。隨著溫度的增加酶解產(chǎn)物溶解度逐漸增大,在55℃時(shí)達(dá)到最大值,當(dāng)繼續(xù)升溫時(shí),溶解度則有所下降。原因是在溫度較低情況下,復(fù)合蛋白酶活性較弱,未能與底物充分作用,不利于可溶性蛋白產(chǎn)生,當(dāng)體系溫度逐漸升高至接近蛋白酶最適溫度時(shí),酶活性增強(qiáng),有利于酶解反應(yīng)進(jìn)行[25],因此HPI溶解度增加,而溫度過高,則會(huì)影響酶分子構(gòu)象,使得酶活性降低,不利于酶促反應(yīng)發(fā)生,導(dǎo)致溶解度下降。
不同酶解反應(yīng)溫度在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖3(b)所示,水解度隨溫度的升高先升后降,55℃時(shí)達(dá)到最大。不同溫度下HPI水解度均在200MPa時(shí)具有最大值,這與關(guān)海寧[12]的研究結(jié)果相似,壓力的存在可顯著促進(jìn)蛋白酶對(duì)蛋白質(zhì)的水解作用,而當(dāng)壓力超過一定的范圍,則會(huì)抑制酶解反應(yīng)進(jìn)行。綜上,選擇55℃為HPI酶解改性反應(yīng)最適溫度。
2.1.5酶解反應(yīng)時(shí)間的確定
不同酶解反應(yīng)時(shí)間在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖4(a)所示,由圖可知,HPI在超高壓處理下(100-300MPa)的溶解度均高于0.1MPa處理,200MPa壓力處理下HPI溶解度最大。在20-50min時(shí)間范圍內(nèi),酶解產(chǎn)物溶解度逐漸增大,50min之后有所下降,但下降幅度較小,這說復(fù)合蛋白酶水解HPI在一定時(shí)間段內(nèi)可起到增溶效果,時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng)時(shí),酶限制性水解蛋白達(dá)到了一定的平衡度,再繼續(xù)水解時(shí)產(chǎn)生了不溶性肽,導(dǎo)致產(chǎn)物溶解度降低[26]。
不同酶解反應(yīng)時(shí)間在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖4(b)所示,隨著時(shí)間延長(zhǎng),HPI水解度先明顯上升而后逐漸平穩(wěn),可能的原因是隨著時(shí)間的增加,底物與蛋白酶結(jié)合達(dá)到飽和,也可能是酶解產(chǎn)物的產(chǎn)生抑制了酶解反應(yīng)進(jìn)行[27],因此50min后水解度變化不明顯。不同改性時(shí)間下的水解度均在200MPa時(shí)達(dá)到最大值。綜上,選擇50min為HPI酶解改性反應(yīng)最佳時(shí)間。
2.2 超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì) HPI 理化性質(zhì)的影響
2.2.1 溶解度
溶解度作為蛋白質(zhì)十分重要的一種功能特性,很大程度上決定了蛋白質(zhì)的乳化性、起泡性等性質(zhì),因此提高溶解度是蛋白質(zhì)改性中一個(gè)重要方面[28]。如圖5所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)產(chǎn)物在不同pH下的溶解度。由圖可知,在pH2.0~10.0范圍內(nèi),HPI及其水解產(chǎn)物的溶解度隨pH增大呈先下降后上升趨勢(shì),均在pH4.0時(shí)達(dá)到最小值,可知等電點(diǎn)在4.0附近。
在pH2.0-10.0范圍內(nèi),HPI水解產(chǎn)物在200MPa時(shí)的溶解度最高,其次是300MPa、100MPa和0.1MPa,均遠(yuǎn)高于改性前HPI的溶解度。溶解度的提升主要有兩方面的原因,一方面,酶解反應(yīng)使HPI致密的空間被破壞,分子發(fā)生重排,親水性區(qū)域暴露,改變了親水與疏水性基團(tuán)的排列與分布;另一方面,大分子蛋白變成小分子量肽段,使蛋白質(zhì)表面親水基團(tuán)與水的接觸面積增大,從而增大了酶解產(chǎn)物的溶解度[9]。由此可以看出,酶解反應(yīng)可以有效改善HPI溶解度且在酶解反應(yīng)中介入適當(dāng)?shù)膲毫稍鰪?qiáng)這種效應(yīng),但是,過高的壓力(300MPa)會(huì)使蛋白質(zhì)重新聚集而酶解效率降低,導(dǎo)致溶解度相對(duì)減小。
2.2.2 起泡性
蛋白質(zhì)溶液經(jīng)過高速剪切攪打后,分子會(huì)吸附到氣-液界面通過分子間相互作用形成粘彈性薄膜,進(jìn)而形成泡沫,其本質(zhì)是蛋白質(zhì)、水和空氣在一定條件下形成的特殊混合物[29]。如圖6所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)HPI起泡性及泡沫穩(wěn)定性的影響,由圖可知,HPI酶解產(chǎn)物的起泡性和泡沫穩(wěn)定性均呈先上升后下降的趨勢(shì),在壓力為200MPa處理時(shí)起泡性最大(49.0%±1.23%),當(dāng)壓力增加到300MPa時(shí),起泡性反而下降。起泡性的增加主要是由于HPI經(jīng)超高壓輔助酶解改性后,蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)展開程度變大,表面電荷增加,可溶性蛋白含量增多,從而使更多蛋白質(zhì)吸附到界面處,有助于液膜的形成[30,31]。然而,當(dāng)體系壓力增加到300MPa時(shí),可能是壓力過大導(dǎo)致蛋白質(zhì)重新聚集,使溶解度減小,分子間作用力減弱,因此起泡性相對(duì)變差。泡沫穩(wěn)定性在100MPa處理下達(dá)到最大,其增加也與溶解度有關(guān),當(dāng)體系中可溶性蛋白含量增加時(shí),有利于泡沫周圍黏性蛋白膜的形成,因此,泡沫穩(wěn)定性得以提高,200MPa及300MPa下泡沫穩(wěn)定性相對(duì)下降是由于隨著酶解進(jìn)程的增加,多肽鏈逐漸縮短且分子量減小導(dǎo)致的,這與Sara[32]等人的研究結(jié)果一致。
2.2.3 乳化性及乳化穩(wěn)定性
蛋白質(zhì)通常作為表面活性劑應(yīng)用于香腸、湯料等食品中,維持體系乳化結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,以延長(zhǎng)制品保存期。乳狀液和泡沫形成的原理非常相似,蛋白質(zhì)的溶解性在其中起著重要作用。如圖7所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響,由圖可知,與HPI相比,在0.1-300MPa處理下,HPI酶解產(chǎn)物乳化性顯著升高(P<0.05),200MPa下乳化性具有最大值為31.56±0.95m2/g??赡苁浅邏狠o助酶解反應(yīng)使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)改變,疏水基團(tuán)暴露,從而提高了分子柔性和表面疏水性,使蛋白質(zhì)分子更易吸附到油水界面[37];此外,酶解改性后HPI酶解產(chǎn)物溶解度明顯提升且肽段的產(chǎn)生也會(huì)使蛋白質(zhì)分子間電荷作用增強(qiáng),從而提升其乳化性。而300MPa時(shí)乳化性下降主要是因?yàn)閴毫υ龃髸r(shí),蛋白質(zhì)分子在氫鍵、疏水及靜電相互作用下重新形成聚集體,表面疏水性降低,因此乳化能力降低[11]。乳化穩(wěn)定性方面,不同壓力處理下HPI酶解產(chǎn)物乳化穩(wěn)定性均有所降低,可能與小分子多肽的產(chǎn)生,使降低界面張力的能力減弱,不能有效防止油滴聚集有關(guān),這與崔憲[33]等人的研究結(jié)果一致。綜合來看,蛋白質(zhì)的乳化能力與乳化穩(wěn)定性的好壞并不存在正相關(guān)。
2.2.4 持水性
蛋白質(zhì)的持水性是指蛋白質(zhì)在食品加工中與水的結(jié)合能力,蛋白質(zhì)分子表面親水性及疏水性強(qiáng)弱、分子的物理截留作用以及結(jié)構(gòu)都會(huì)影響持水性,持水性好壞可直接影響食品的嫩度和口感。如圖8所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物持水性的影響,由圖可知,HPI持水性為3.1±0.17g/g,壓力在0.1MPa、100MPa、200MPa、300MPa時(shí)酶解產(chǎn)物持水性分別為3.5±0.09g/g、2.7±0.08g/g、2.73±0.06g/g、2.9±0.08g/g,可見,0.1MPa處理下酶解產(chǎn)物持水性最大,高于改性前HPI,而100-300MPa處理時(shí)顯著下降(P<0.05),低于改性前HPI??赡艿脑蚴荋PI在蛋白酶的作用下肽鏈斷裂,極性基團(tuán)暴露,使部分氨基與羧基處于游離狀態(tài),蛋白質(zhì)分子通過極性基團(tuán)吸水,因而持水性增加。持水性下降的原因可能與蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)有關(guān),蛋白質(zhì)經(jīng)高壓酶解后,分子量和粘度逐漸降低,蛋白質(zhì)分子無序性程度增加,從而導(dǎo)致持水性下降[34],當(dāng)壓力再繼續(xù)增加時(shí),加強(qiáng)了蛋白的水合作用,又進(jìn)一步促進(jìn)水分吸收[35]。
圖8 超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物持水性的影響
2.2.5 持油性
蛋白質(zhì)持油性是指蛋白質(zhì)吸附油脂的能力,將蛋白質(zhì)應(yīng)用于肉制品加工中可有效降低肉中油脂及汁液流失。如圖9所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物持油性的影響,研究表明,蛋白質(zhì)表面疏水性及其氨基酸側(cè)鏈殘基的非極性基團(tuán)可影響蛋白質(zhì)對(duì)油脂的吸附能力[36]。本實(shí)驗(yàn)中,蛋白質(zhì)持油性隨壓力的升高呈先上升后下降的趨勢(shì),HPI持油性為2.52±0.09g/g,0.1-300MPa時(shí)持油性分別為3.95±0.10g/g、4.01±0.13g/g、4.35±0.08g/g、3.26±0.05g/g,可見,改性后蛋白質(zhì)的持油性較改性前相比均有顯著提高(P<0.05),200MPa時(shí)達(dá)到最大值??赡艿脑蚴?,HPI經(jīng)酶解改性后溶解度增大,疏水基團(tuán)暴露,提高了蛋白質(zhì)與油脂的接觸率與親和力,因此其酶解產(chǎn)物的持油率有所提升,但當(dāng)壓力達(dá)到300MPa時(shí),蛋白質(zhì)在壓力的作用下發(fā)生聚集,溶解度因此降低且表面疏水基團(tuán)被蛋白質(zhì)聚集體所掩蓋,導(dǎo)致其持油能力下降,這與林素麗[37]等人研究結(jié)果一致。
3 結(jié)論
本研究在0.1-300MPa超高壓下輔助復(fù)合蛋白酶對(duì)HPI進(jìn)行酶解改性,以溶解度及水解度為判定指標(biāo),得到最佳改性條件為:加酶量5000U/g、改性pH8.0、改性溫度55℃、改性時(shí)間50min。在此條件下酶解后的蛋白溶解性顯著提升(P<0.05),當(dāng)壓力為200MPa時(shí)溶解性最高,隨后下降。蛋白起泡性有所提升,并在200MPa時(shí)達(dá)到最大,而泡沫穩(wěn)定性在100MPa處理下最高,與起泡性變化趨勢(shì)并不完全一致。經(jīng)酶解后HPI的乳化性隨壓力升高逐漸增大而后減小,當(dāng)壓力為200MPa時(shí)其乳化性最高,而乳化穩(wěn)定性存在不同程度的下降。由持水性測(cè)定結(jié)果可知,0.1MPa處理時(shí)HPI持水性最大且高于HPI,隨著壓力的增加,持水性反而下降。由持油性測(cè)定結(jié)果可知,改性后蛋白質(zhì)的持油性較HPI相比均有顯著提高(P<0.05),200MPa時(shí)達(dá)到最大值。綜上所述,當(dāng)超高壓壓力在200MPa時(shí)對(duì)HPI酶解改性具有較好的促進(jìn)作用,能夠明顯改善HPI的理化性質(zhì)。
參考文獻(xiàn)
[1] 王 冰 , 楊 楊 , 范洪臣 , 等 . 熱 處 理 溫 度 和 離 子 強(qiáng) 度 對(duì) 漢 麻 蛋 白 熱 聚 集 行 為 的 影 響 [J]. 食 品 安 全 質(zhì) 量 檢 測(cè) 學(xué) 報(bào),2022,13(16):5337-5344. WANG Bing,YANG Yang,FAN Hongchen, al. Effects of heat treatment temperature and ionic strength on thermal aggregation behavior of hemp protein[J]. Journal of Food Safety & Quality,2022,13(16):5337-5344.
[2] 石杰,宋淑敏,魏連會(huì),等. 漢麻籽蛋白的分級(jí)提取及產(chǎn)物功能特性的研究[J]. 糧食與油脂,2021,34(11):132-136. SHI Jie,SONG Shumin,WEI Lianhui, et al. Study on fractionation of hemp seed protein and functional properties of the product[J]. Cereals & Oils, 2021,34(11):132-136.
[3] MALOMO S A,RONG H,ALUKO R E. Structural and functional properties of hemp seed protein products[J]. Journal of Food Science,2014,79(8):1512-1521.
[4] 龐鑫慧,蘇丹,楊楊,王冰,等.漢麻蛋白改性及其表征方法的研究進(jìn)展[J].食品研究與開發(fā),2022,43(4):203-208. PANG Xinhui,SU Dan,YANG Yang,WANG Bing,et al.Research progress in hemp protein modification and its characterization methods[J]. Food Research and Development,2022,43(4):203-208.
[5] 徐瑤.超高壓輔助酶解對(duì)沙棘汁品質(zhì)的影響[J].農(nóng)產(chǎn)品加工,2019(23):43-45. XU Yao. Effect of ultra high pressure enzymolysis on the quality of seabuckthorn juice[J]. Farm Products Processing,2019(23):43-45.
[6] ZHAO G,LIU Y,REN J,et al. Effect of protease pretreatment on the functional properties of protein concentrate from defatted peanut flour [J]. Journal of Food Process Engineering,2013,36(1):9-17.
[7] INE R,MARIE L,ELLEN F,et al. Air-water interfacial properties of enzymatic wheat gluten hydrolyzates determine their foaming behavior[J]. Food Hydrocolloids,2016,55:155-162.
[8] 王章存,袁路陽,張露,等.生物酶解法去除大豆蛋白抗原性研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2018,39(15):317-321. WANG Zhangcun,YUAN Luyang,ZHANG Lu,et al.Research progress of enzymatic removal of soybean protein antigenicity[J]. Science and Technology of Food Industry,2018,39(15):317-321.
[9] 龐佳坤,鄭遠(yuǎn)榮,劉振民,等.超高壓對(duì)乳清分離蛋白結(jié)構(gòu)和抗氧化活性的影響[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2020,46(04):72-77. PANG Jiakun,ZHENG Yuanrong,LIU Zhenmin, et al. Effects of ultra-high pressure on structure and antioxidant activity of whey protein isolates[J]. Food and Fermentation Industries,2020,46(4):72-77.
[10] 鄭環(huán)宇,孫美馨,張林,等.超高壓均質(zhì)處理大豆分離蛋白-磷脂復(fù)合物的理化性質(zhì)研究[J].大豆科技,2019(3):14-21. ZHENG Huanyu,SUN Meixin,ZHANG Lin, et al. Physicochemical properties of soy protein isolate-phospholip?id complex treated by ultrahigh pressure homogenization[J]. Soybean Science & Technology,2019(3):14-21.
[11] 劉寧,楊柳怡,齊雅墨,等.限制性酶解-超高壓處理對(duì)米渣蛋白乳化性的影響[J].陜西科技大學(xué)學(xué)報(bào),2020,38(6):30-33+39. LIU Ning,YANG Liuyi,QI Yamo, et al.Effect of controlled enzymolysis and high hydrostatic pressure on the emulsibility of rice residue protein[J]. Journal of Shaanxi University of Science & Technology,2020,38(6):30-33+39.
[12] 關(guān)海寧,徐筱君,孫薇婷,等.超高壓協(xié)同酶法條件下不同分子量大豆分離蛋白水解肽乳化性及抗氧化性研究[J].食品安全 質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2022,13(12):3780-3786. Guan Hanning,Xu Youjun,Sun Weiting, et al. Study on emulsification and antioxidant properties of soy protein isolate hydrolysatic peptides with different molecular weight by enzymatic hydrolysis under high hydrostatic pressure[J]. Journal of Food Safety & Quality,2022,13(12):3780-3786.
[13] 楊文博,張英華.蛋白質(zhì)水解度的測(cè)定方法研究[J].中國(guó)調(diào)味品,2014,39(3):88-90. Yang Wenbo,Zhang Yinghua. Study on the determination methods of hydrolysis degree of protein[J].China Condiment ,2014,39(3):88-90.
[14] 齊奇,劉河濤,楊文君,等.大豆胨制備工藝條件研究[J].糧油食品科技,2015,23(1):74-78. Qi Qi,Liu Hetao,Yang Wenjun, et al. Study on the preparation of soya peptone[J].Science and Technology of Cereals,Oils and Foods,2015,23(1):74-78.
[15] AGYARE K K,ADDO K,XIONG Y L. Emulsifying and foaming properties of transglutaminase-treated wheat gluten hydrolysate as influenced by pH,temperature and salt[J]. Food Hydrocolloids,2009,23(1):72-81.
[16] SHANSHAN JIANG,MUHAMMAD ALTAF HUSSAIN,JIANJUN CHENG, et al. Effect of heat treatment on physicochemical and emulsifying properties of polymerized whey protein concentrate and polymerized whey protein isolate [J] . LWT . 2018,98:134-140
[17] WANG W,SHEN M,LIU S,et al. Gel properties and interactions of mesona blumes polysaccharidesoy protein isolates mixed gel:The effect of salt addition[J]. Carbohydrate Polymers,2018,192:193-201.
[18] CHEN C,CHI Y,ZHAO M,et al. Influence of degree of hydrolysis on functional properties,Antioxidant and ACE Inhibitory Activities of Egg White Protein Hydrolysate[J]. Food Science and Biotechnology,2012,21(1):27-34.
[19] 喬楊波,韓麗娟,王樹林,等.不同蛋白酶酶解對(duì)蠶豆蛋白生物活性的影響[J].中國(guó)油脂,2020,45(7):56-60. Qiao Yangbo,Han Lijuan,Wang Shulin, et al. Effect of different protease enzymatic hydrolysis on biological activity of broad bean protein[J]. China Oils and Fats,2020,45(7):56-60.
[20] 沈敏江,王文輝,劉麗,等. 核桃蛋白有限酶解增溶改性的工藝研究[J]. 中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2015,30(8):93-98. Shen Minjiang,Wang Wenhui,Liu Li,,et al. Study on the technology of limited enzymatic hydrolysis and solubilization of Walnut protein[J]. Journal of the Chinese Cereals and Oils Association, 2015,30(8):93-98.
[21] 李明月,杜鈺,姚曉玲,等.超高壓處理對(duì)蛋白質(zhì)功能特性的影響[J].食品科技,2018,43(1):50-54. Li Mingyue,Du Yu,Yao Xiaoling, et al. Effects of ultrahigh pressure processing on protein functional properties[J].Food Science and Technology,2018,43(1):50-54.
[22] 魏連會(huì),董艷,石杰,等.漢麻籽抗氧化肽的制備與氨基酸序列分析[J].中國(guó)油脂,2022,47(4):36-40. Wei Lianhui,Dong Yan,Shi Jie, et al. Preparation and amino acid sequence analysis of antioxidant peptides from hemp seeds[J]. China Oils and Fats,2022,47(4):36-40.
[23] 賈聰,華欲飛,陳業(yè)明,等.pH 和阿拉伯膠對(duì)大豆分離蛋白/大豆蛋白酶解產(chǎn)物乳化性質(zhì)的影響[J].食品與發(fā)酵工 業(yè),2017,43(5):25-29. Jia Cong,Hua Yufei Chen Yeming, et al.. Effect of pH and acacia on emulsifying properties of soybean protein isolate/Soybean protease hydrolysate[J]. Food and Fermentation Industries,2017,43(5):25-29.
[24] 陳林,吳克剛,柴向華,等.物理預(yù)處理改善食品蛋白酶解特性的研究進(jìn)展[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2013,39(10):181-186. Chen Lin,Wu Kegang,Chai Xianghua, et al. Progress in improving proteolytic properties of food by physical pretreatment[J]. Food and Fermentation Industries,2013,39(10):181-186.
[25] 于棟,高洋,何新蕾.酶法制備黑豆粕粉多肽的工藝研究[J].中國(guó)釀造,2021,40(4):143-147. Yu Dong,Gao Yang,He Xinlei. Preparation of polypeptides from black bean meal by enzymatic method[J]. China Brewing,2021,40(4):143-147.
[26] 張晶. 均質(zhì)及酶解對(duì)大米蛋白功能特性的影響及機(jī)理的初探[D]. 合肥:安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)糧食、油脂及植物蛋白工程碩士 學(xué)位論文,2016:45-49. Zhang Jing. The effects of homogeneity and enzymatic hydrolysis on functional properties of rice protein and preliminary study on its mechanism[D].He Fei: Anhui Agricultural University 、 Master's thesis in Grain, Oil and Vegetable Protein Engineering,2016:45-49.
[27] 陳日春,鄭寶東.鰱魚魚鱗膠原蛋白抗氧化活性肽提純及結(jié)構(gòu)鑒定研究進(jìn)展[J].食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào),2017,8(4): 1339-1345. Chen Richun,Zheng Baodong. Research progress on purification and structure identification of antioxidant activity peptides of collagen in silver carp fish[J]. Journal of Food Safety & Quality,2017,8(4):1339-1345.
[28] 易佳,劉昆侖.超微聯(lián)合超聲波優(yōu)化提取米糠蛋白及其對(duì)米糠蛋白溶解性的影響[J].食品研究與開發(fā),2022,43(19):117-123. YI Jia,LIU Kunlun. Optimization of extraction process of rice bran protein by ultrafine grinding combined with ultrasound and effect of extraction on protein solubility[J]. Food Research and Development,2022,43(19):117-123.
[29] 張思雨,程建軍,孫玉雪,等.熱處理對(duì)乳清蛋白原料起泡性、理化特性的影響及關(guān)系研究[J/OL].食品與發(fā)酵工 業(yè):1-10[2022-12-22]. Zhang Siyu,Cheng Jianjun,Sun Yuxue, et al.. Effect of heat treatment on foaming properties of whey protein ingredients and its relationship with physicochemical and structural[J/OL]. Food and Fermentation Industries:1-10[2022-12-22].
[30] RODRIGUEZ PATINO J M,MINONES CONDE J,LINARES H M,et al. Interfacial and foaming properties of enzyme-induced hydrolysis of sunflower protein isolate[J]. Food Hydrocolloids,2007,21(5-6):782-793.
[31] ROBITAILLE G,AYERS C. Effect of K-casein glycosylation on heat stability of milk[J]. Food Research International,1995,28(1):17-21.
[32] Sara E Molina Ortiz,Jorge R Wagner. Hydrolysates of native and modified soy protein isolates: structural characteristics, solubility and foaming properties[J]. Food Research International,2002,35(6):511-518.
[33] 崔憲,劉容旭,姜帆,等.植物乳桿菌發(fā)酵對(duì)大豆分離蛋白功能性質(zhì)影響研究[J].食品工業(yè)科技,2016,37(3):177-180+186. CUI Xian,LIU Rongxu,JIANG Fan, et al.Effect of fermentation by lactobacillus plantrum on functional properties of soybean protein[J]. Science and Technology of Food Industry, 2016,37(3):177-180+186.
[34] 管弋铦,何苗,熊雙麗.超高壓處理對(duì)大米蛋白功能特性及結(jié)構(gòu)的影響[J].食品工業(yè)科技,2016,37(20):104-109. GUAN Yixian,HE Miao,XIONG Shuangli. Effects of ultra high pressure treatment on functional properties and structure of rice proteins[J]. Science and Technology of Food Industry,2016,37(20):104-109.
[35] 胡小軍,李春蘭,王標(biāo)詩,等.超高壓處理對(duì)蝦滑預(yù)制菜品質(zhì)特性的影響[J/OL].食品工業(yè)科技:1-11[2023-02-09]. Hu Xiaojun,Li Chunlan,Wang Biaoshi, et al. Effect of ultra-high pressure on the quality properties of shrimp slips prepared dishes[J/OL]. Science and Technology of Food Industry, 1-11[2023-02-09].
[36] RESENDIZ-VAZQUEZ J.A,ULLOA J.A,URÍAS-SILVAS J.E,et al. Effect of high-intensity ultrasound on the technofunctional properties and structure of jackfruit (Artocarpus heterophyllus)seed protein isolate[J]. Ultrasonics-Sonochemistry,2017,37:436-444.
[37] 林素麗. 超高壓處理對(duì)米糠蛋白功能及結(jié)構(gòu)特性的影響研究[D].浙江大學(xué),2017:20-80. Lin Suli. Effects of high pressure treatment on functional and structural properties of rice bran protein[D].Zhejiang University,2017:20-80.
文獻(xiàn)摘自:劉容旭,李春雨,王語聰,謝智鑫,謝宜桐,李雙鵬,劉丹怡,韓建春.超高壓輔助酶解法改性漢麻分離蛋白及其理化性質(zhì)的研究[J/OL].食品工業(yè)科技:1-16[2023-04-08].DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2023010016.
