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        作者:劉容旭等   來源:   發(fā)布時(shí)間:2023-05-09   Tag:   點(diǎn)擊:
        [麻進(jìn)展]超高壓輔助酶解法改性漢麻分離蛋白及其理化性質(zhì)的研究

         要:本研究以漢麻分離蛋白(Hemp Protein Isolate,HPI)為原料,通過超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)HPI進(jìn)行改性,以溶解度和水解度為判定指標(biāo)篩選酶解改性反應(yīng)最佳條件,并探究超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)酶解產(chǎn)物溶解性、起泡性、乳化性、持水性、持油性的影響。結(jié)果表明,HPI酶解反應(yīng)最適條件為:加酶量(復(fù)合蛋白酶)5000U/g、酶解改性pH8.0、酶解改性溫度55℃、酶解改性時(shí)間50min。以HPI為對(duì)照,當(dāng)壓力為200MPa時(shí),酶解產(chǎn)物的溶解度、起泡性、乳化性、持油性最高,壓力為100MPa時(shí),泡沫穩(wěn)定性最好,酶解后的乳化穩(wěn)定性存在不同程度的下降,壓力為0.1MPa時(shí)其持水性達(dá)到最大值。綜上所述,超高壓技術(shù)能夠有效促進(jìn)HPI的酶解改性反應(yīng),且壓力為200MPa時(shí),酶解產(chǎn)物的理化性質(zhì)最好。

        關(guān)鍵詞:漢麻分離蛋白(HPI),超高壓(UHP),酶解,理化性質(zhì)

         

        漢麻(Cannabis sativa L.),又名火麻、大麻等,在我國(guó)是一種傳統(tǒng)的藥食同源桑科植物,由漢麻葉、籽、莖稈等部分組成[1],漢麻籽中富含的漢麻分離蛋白(hemp protein isolate,HPI)氨基酸種類及含量豐富,消化率高且致敏性低,具有增強(qiáng)免疫力、抗疲勞、降血糖、維持腸道菌群平衡等作用,是一種極具價(jià)值的多功效植物蛋白資源[2,3]。但漢麻蛋白質(zhì)溶解度較低,功能性質(zhì)較差[9],導(dǎo)致其難以作為原輔料應(yīng)用于食品及營(yíng)養(yǎng)保健品生產(chǎn)中,因此,有必要通過某些技術(shù)手段改善其功能特性以更好的開發(fā)利用漢麻蛋白,提升其市場(chǎng)競(jìng)爭(zhēng)力。

        目前,常用的蛋白質(zhì)改性技術(shù)有物理改性技術(shù)、化學(xué)改性技術(shù)、酶解改性技術(shù)等,其中物理改性技術(shù)如熱處理易產(chǎn)生熱聚集使蛋白質(zhì)的利用率降低,化學(xué)改性技術(shù)會(huì)使得酸堿試劑有殘留,降低蛋白營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,不利于消化吸收。酶解改性技術(shù)主要是指利用蛋白酶在適宜條件下水解蛋白質(zhì)使肽鍵斷裂,導(dǎo)致可電離基團(tuán)數(shù)量增加、被掩蓋的疏水片段暴露,從而改善蛋白質(zhì)的功能性質(zhì)[4]。酶解反應(yīng)過程十分溫和、副產(chǎn)物較少且無毒、蛋白質(zhì)營(yíng)養(yǎng)價(jià)值破壞程度小,改性后蛋白質(zhì)與原始蛋白質(zhì)相比,具有更低的分子量和更好的功能特性。此外,酶解之后產(chǎn)生的多肽還具有一定的生物活性,如降血壓、降血糖、抗氧化活性等,因此酶解改性是改善蛋白質(zhì)功能特性的首選方法[5,6]。但酶解改性同時(shí)也存在酶解過程隨機(jī)、酶利用率低和酶解效率低等問題[10]。故有必要尋找能夠解決酶解反應(yīng)上述問題的技術(shù)方法,從而擴(kuò)大酶解改性技術(shù)的應(yīng)用范圍。

        超高壓技術(shù)(Ultra-High Pressure processing,UHP)是指將待處理物品置于高壓腔體中,在一定溫度和時(shí)間范圍內(nèi),以水為介質(zhì)傳遞壓力進(jìn)行高壓(100-1000MPa)處理,使食品中蛋白質(zhì)、多糖等大分子物質(zhì)變性或微生物滅活,以達(dá)到改變理化和功能特性、滅菌保藏、延長(zhǎng)產(chǎn)品保存期等目的[7,8]。故超高壓技術(shù)可促進(jìn)蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變和酶解作用的發(fā)生,從而達(dá)到改善蛋白質(zhì)功能性質(zhì)、提高酶解效率的目的[11]。關(guān)海寧[12]等人利用超高壓協(xié)同酶法制備不同分子量大豆分離蛋白水解肽,其乳化性及抗氧化性均得到顯著提高。

        本研究以漢麻分離蛋白酶解改性為支撐點(diǎn),輔助以超高壓技術(shù),著重研究漢麻分離蛋白高效的改性措施,旨在獲得更加優(yōu)質(zhì)的漢麻蛋白質(zhì)產(chǎn)品,為漢麻蛋白產(chǎn)品的深度研發(fā)與應(yīng)用提供相關(guān)的理論指導(dǎo)和技術(shù)支持,對(duì)植物蛋白質(zhì)資源的高值化利用具有深遠(yuǎn)意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        漢麻分離蛋白(96%)食品級(jí)黑龍江省大慶市星火牧場(chǎng);復(fù)合蛋白酶(100000U/g桿菌蛋白酶復(fù)合體,主酶是堿性蛋白酶)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;堿性蛋白酶(200000U/g)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;木瓜蛋白酶(100000U/g)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;中性蛋白酶(200000U/g)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;胰蛋白酶(250NFU/mg)試劑級(jí)北京Solarbio科技有限公司;氫氧化鈉分析純天津凱通化學(xué)試劑有限公司;鹽酸分析純天津凱通化學(xué)試劑有限公司;甲醛溶液分析純寶雞正源化工科技股份有限公司;大豆油食品級(jí)九三糧油工業(yè)集團(tuán)有限公司。

        HHP-400超高壓設(shè)備沈陽人和機(jī)電工程設(shè)備有限公司;HH-4型數(shù)顯恒溫水浴鍋金壇市雙捷實(shí)驗(yàn)儀器廠;Sartorius BSA223S型電子天平賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;PHS-3C型pH計(jì)梅特勒-托利多儀器有限公司;DF-1集熱式磁力攪拌器金壇市雙捷實(shí)驗(yàn)儀器廠;T50高速剪切機(jī)德國(guó)IKA公司;721型分光光度計(jì)上海元析儀器有限公司;UVS-4型漩渦振蕩儀濟(jì)南千司生物技術(shù)有限公司;FD5-3型冷凍干燥機(jī)美國(guó)SIM公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 漢麻分離蛋白酶解改性工藝

        配制50g/L的漢麻蛋白溶液,用1mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)溶液pH至最適值。隨后加入蛋白酶與上述溶液混勻,將此蛋白溶液密封在聚氯乙烯袋中,放入HHP-400超高壓設(shè)備中于不同壓力(0.1~300MPa)下,在設(shè)定溫度中進(jìn)行酶解改性反應(yīng)單因素試驗(yàn),以溶解度及水解度為判定指標(biāo),篩選出最適酶解反應(yīng)條件。水解物經(jīng)FD5-3型冷凍干燥機(jī)進(jìn)行凍干得到蛋白樣品。

        1.2.2 酶解反應(yīng)條件篩選單因素試驗(yàn)

        1.2.2.1 蛋白酶選擇

        選用以下五種蛋白酶分別在各自最適條件下對(duì)漢麻分離蛋白進(jìn)行酶解改性40min,反應(yīng)完成后滅酶處理(85℃水浴30min),測(cè)定其水解度及溶解度以篩選酶解改性反應(yīng)最佳酶制劑。

        1 不同蛋白酶的酶解條件

          

        1.2.2.2加酶量確定

        固定改性pH7.5,改性溫度55℃,改性時(shí)間40min,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同加酶量(2000、3000、4000、5000、6000U/g)對(duì)溶解度及水解度的影響。

        1.2.2.3酶解改性pH確定

        固定改性溫度55℃,改性時(shí)間40min,加酶量5000U/g,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同改性pH(6.5、7.0、7.5、8.0、8.5)對(duì)溶解度及水解度的影響。

        1.2.2.4酶解改性溫度確定

        固定改性pH8.0,改性時(shí)間40min,加酶量5000U/g,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同改性溫度(45、50、55、60、65℃)對(duì)溶解度及水解度的影響。

        1.2.2.5酶解改性時(shí)間確定

        固定改性pH8.0,改性溫度55℃,加酶量5000U/g,在不同壓力(0.1~300MPa)下酶解,探究不同改性時(shí)間(20、30、40、50、60min)對(duì)溶解度及水解度的影響。

        1.2.3水解度測(cè)定

        參考文獻(xiàn)[13]方法,略有改動(dòng)。取5mL漢麻分離蛋白水解液與60mL蒸餾水于燒杯中混合均勻,用0.05mol/L NaOH標(biāo)液滴定至pH為8.2;加入10mL中性甲醛溶液與上述溶液混勻,再用0.05mol/L NaOH標(biāo)液滴至pH9.2,記錄消耗NaOH的量。將蛋白質(zhì)水解液換成等量蒸餾水作為空白試驗(yàn),總氮含量測(cè)定參考文獻(xiàn)[13]。氨基氮含量及水解度含量計(jì)算公式如下:

         

        式中:X表示氨基氮含量,g/mL;V1表示酶解液加甲醛溶液后滴至pH9.2時(shí)NaOH消耗量,mL;Vo表示空白加甲醛溶液后滴至pH9.2時(shí)NaOH消耗量,mL;V表示取樣體積,mL;C表示NaOH標(biāo)液摩爾濃度,mol/L;0.014表示與1mL NaOH標(biāo)定溶液[CNaOH=1mol/L]相當(dāng)?shù)牡馁|(zhì)量,g;X1表示總氮含量,g/mL。

        1.2.4溶解度測(cè)定

        參考文獻(xiàn)[14]方法,略有改動(dòng)。稱取0.5g經(jīng)冷凍干燥的蛋白質(zhì)樣品于燒杯中,加入50mL蒸餾水,利用0.5mol/L NaOH溶液和0.5mol/LHCI溶液調(diào)節(jié)溶液pH為2.0-10.0,25℃恒溫?cái)嚢?0min,移入離心管中,4000r/min離心10min后收集上清液,利用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定上清液中蛋白質(zhì)含量,總蛋白含量通過凱氏定氮法測(cè)定。通過以下公式計(jì)算溶解度:

         

        式中:X表示上清液蛋白質(zhì)量,g/mL;X1表示樣品中總蛋白質(zhì)量,g/mL。

        1.2.5 起泡性及泡沫穩(wěn)定性測(cè)定

        蛋白起泡性(FAI)及泡沫穩(wěn)定性(FSI)測(cè)定參考Agyare[15]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。稱取1g凍干蛋白質(zhì)樣品置于離心管中,加入50mL蒸餾水,記總體積為V0,然后使用高速剪切機(jī)10000r/min均質(zhì)2min,迅速倒入帶有刻度的量筒中,量取總體積記為V1,均質(zhì)停止30min后再次量取總體積,記為V2。利用下列公式計(jì)算起泡性及泡沫穩(wěn)定性:

         

        式中:V0表示起始溶液在量筒中的高度,mL;V1表示經(jīng)高速均質(zhì)后液體總高度,mL;V2表示高速均質(zhì)停止30min后液體總高度,mL。

        1.2.6乳化性及乳化穩(wěn)定性測(cè)定

        蛋白乳化性(EAI)及乳化穩(wěn)定性(ESI)測(cè)定參考Pearce等人[16]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。配制1%的蛋白質(zhì)樣品溶液與食用大豆油以3:1的比例混勻,使用高速剪切機(jī)10000r/min均質(zhì)2min形成均勻乳狀液,立即吸取100μL,加入5mL 0.1%SDS溶液,500nm處測(cè)定吸光值記為A0,靜置10min后同樣測(cè)定吸光值記為A10。利用下列公式計(jì)算乳化性及乳化穩(wěn)定性:

         

        式中:T表示渾濁度,2.303;C表示蛋白質(zhì)溶液原始濃度,g/mL;Ø表示溶液中油的體積分?jǐn)?shù)(0.25);N表示稀釋倍數(shù);A0表示0min時(shí)的吸光值。

         

        式中:A0表示0min時(shí)的吸光值;A10表示10min時(shí)的吸光值。

        1.2.7 持水性測(cè)定

        蛋白質(zhì)持水性測(cè)定參考Wang等人[17]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。稱1g凍干蛋白質(zhì)樣品于離心管中,加入30mL蒸餾水于漩渦振蕩儀上振勻,靜置20min后,25℃下離心(6000r/min)10min,對(duì)沉淀樣品稱重,利用下列公式計(jì)算持水性:

         

        式中:W1表示離心后殘留物質(zhì)量,g;W0表示樣品質(zhì)量,g。

        1.2.8 持油性測(cè)定

        蛋白持油性測(cè)定參考Chen等人[18]的方法,并根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。稱1g凍干蛋白質(zhì)樣品于離心管中,加入10mL大豆油,于漩渦振蕩儀上振勻,25℃下離心(6000r/min)10min,對(duì)沉淀樣品稱重,利用下列公式計(jì)算持油性:

         

        式中:M1表示離心后殘留物質(zhì)量,g;M0表示樣品質(zhì)量,g。

        1.3數(shù)據(jù)處理

        采用IBM SPSSS tatistics26進(jìn)行顯著性分析(P<0.05);利用Statistic8、Origin 2019 Pro軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析及繪圖,所有實(shí)驗(yàn)組均進(jìn)行三次平行實(shí)驗(yàn)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 漢麻分離蛋白超高壓輔助酶解反應(yīng)最適條件研究

        2.1.1 蛋白酶選擇

        本實(shí)驗(yàn)選擇復(fù)合蛋白酶、堿性蛋白酶、木瓜蛋白酶、中性蛋白酶及胰蛋白酶對(duì)漢麻分離蛋白在各自最適酶解pH和溫度下進(jìn)行酶解反應(yīng),以溶解度及水解度為判定標(biāo)準(zhǔn),篩選最佳酶制劑,其結(jié)果如下表2所示。

        2 不同蛋白酶對(duì)HPI改性效果影響

          

        2.1.2加酶量確定

        不同加酶量在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖1(a)所示,由圖可知,隨著復(fù)合蛋白酶用量增加,HPI水解產(chǎn)物溶解度逐漸增大,當(dāng)加酶量超過5000U/g時(shí),溶解度稍有下降,可能是隨著酶量增加,酶與底物結(jié)合更加充分,水解反應(yīng)逐漸增強(qiáng),表現(xiàn)為溶解度的上升,而繼續(xù)增加酶量時(shí),酶與蛋白質(zhì)作用會(huì)產(chǎn)生一部分疏水性多肽,而溶解度的下降可能是疏水性多肽的形成引起的[20]。當(dāng)壓力達(dá)到100、200或300MPa時(shí),酶解產(chǎn)物溶解度在不同加酶量下均高于0.1MPa,在200MPa時(shí)具有最大值,可推測(cè)出HPI酶解反應(yīng)在壓力超過200MPa時(shí)受到抑制,是因?yàn)檫m當(dāng)?shù)某邏禾幚硎沟鞍踪|(zhì)構(gòu)象發(fā)生變化,結(jié)構(gòu)變得伸展、暴露更多酶切位點(diǎn),促進(jìn)酶解反應(yīng)進(jìn)行,使可溶性蛋白含量增多,而當(dāng)壓力到達(dá)300MPa時(shí),過高的壓力使蛋白質(zhì)分子間發(fā)生了聚集或者酶活性降低,抑制了酶解反應(yīng)[21],導(dǎo)致溶解度下降。

        不同加酶量在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖1(b)所示,由圖可知,HPI水解產(chǎn)物水解度隨酶量增加先明顯上升后緩慢上升,說明酶用量增加可以增大酶解程度[22],但在這個(gè)過程中,蛋白酶逐漸趨向飽和,因此水解度隨后上升緩慢。與溶解度變化趨勢(shì)一致,水解度在200MPa時(shí)達(dá)到最大值。綜上,選擇5000U/g為HPI酶解改性反應(yīng)最適加酶量。

          

        2.1.3 酶解反應(yīng) pH 確定

        不同酶解反應(yīng)pH在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖2(a)所示,隨著pH的增加,不同壓力下HPI水解物溶解度均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在pH為8.0時(shí)溶解度達(dá)到最大,原因可能與復(fù)合蛋白酶酶解最佳酸堿環(huán)境有關(guān),當(dāng)pH過大或過小時(shí),會(huì)引起酶構(gòu)象的改變且影響酶分子活性部分上有關(guān)基團(tuán)的解離,導(dǎo)致蛋白酶活性減弱,不利于酶作用于底物使可溶性蛋白質(zhì)產(chǎn)生[23]。壓力影響方面,不同pH下溶解度均在200MPa時(shí)達(dá)到最大值。

        不同酶解反應(yīng)pH在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖2(b)所示,當(dāng)壓力為200MPa時(shí)蛋白質(zhì)水解度達(dá)到最大,顯著高于其他壓力條件下的水解度(P<0.05),主要是由于超高壓處理可促進(jìn)酶解反應(yīng)進(jìn)行,有效提高水解效率,而壓力過大則會(huì)減弱酶活性以及對(duì)酶解反應(yīng)起到抑制作用[24],從而使水解度有所降低。當(dāng)pH為8.0時(shí),在不同壓力作用下水解度均達(dá)到最大值。綜上,選擇pH8.0為HPI酶解改性反應(yīng)最佳pH值。

          

        2.1.4 酶解反應(yīng)溫度的確定

        不同酶解反應(yīng)溫度在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖3(a)所示,由圖可知,不同溫度下,HPI溶解度均在200MPa時(shí)達(dá)到最大值,較高的壓力反而對(duì)酶解反應(yīng)有抑制作用。隨著溫度的增加酶解產(chǎn)物溶解度逐漸增大,在55℃時(shí)達(dá)到最大值,當(dāng)繼續(xù)升溫時(shí),溶解度則有所下降。原因是在溫度較低情況下,復(fù)合蛋白酶活性較弱,未能與底物充分作用,不利于可溶性蛋白產(chǎn)生,當(dāng)體系溫度逐漸升高至接近蛋白酶最適溫度時(shí),酶活性增強(qiáng),有利于酶解反應(yīng)進(jìn)行[25],因此HPI溶解度增加,而溫度過高,則會(huì)影響酶分子構(gòu)象,使得酶活性降低,不利于酶促反應(yīng)發(fā)生,導(dǎo)致溶解度下降。

        不同酶解反應(yīng)溫度在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖3(b)所示,水解度隨溫度的升高先升后降,55℃時(shí)達(dá)到最大。不同溫度下HPI水解度均在200MPa時(shí)具有最大值,這與關(guān)海寧[12]的研究結(jié)果相似,壓力的存在可顯著促進(jìn)蛋白酶對(duì)蛋白質(zhì)的水解作用,而當(dāng)壓力超過一定的范圍,則會(huì)抑制酶解反應(yīng)進(jìn)行。綜上,選擇55℃為HPI酶解改性反應(yīng)最適溫度。

          

        2.1.5酶解反應(yīng)時(shí)間的確定

        不同酶解反應(yīng)時(shí)間在不同壓力下對(duì)HPI溶解度的影響如圖4(a)所示,由圖可知,HPI在超高壓處理下(100-300MPa)的溶解度均高于0.1MPa處理,200MPa壓力處理下HPI溶解度最大。在20-50min時(shí)間范圍內(nèi),酶解產(chǎn)物溶解度逐漸增大,50min之后有所下降,但下降幅度較小,這說復(fù)合蛋白酶水解HPI在一定時(shí)間段內(nèi)可起到增溶效果,時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng)時(shí),酶限制性水解蛋白達(dá)到了一定的平衡度,再繼續(xù)水解時(shí)產(chǎn)生了不溶性肽,導(dǎo)致產(chǎn)物溶解度降低[26]。

        不同酶解反應(yīng)時(shí)間在不同壓力下對(duì)HPI水解度的影響如圖4(b)所示,隨著時(shí)間延長(zhǎng),HPI水解度先明顯上升而后逐漸平穩(wěn),可能的原因是隨著時(shí)間的增加,底物與蛋白酶結(jié)合達(dá)到飽和,也可能是酶解產(chǎn)物的產(chǎn)生抑制了酶解反應(yīng)進(jìn)行[27],因此50min后水解度變化不明顯。不同改性時(shí)間下的水解度均在200MPa時(shí)達(dá)到最大值。綜上,選擇50min為HPI酶解改性反應(yīng)最佳時(shí)間。

          

        2.2 超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì) HPI 理化性質(zhì)的影響

        2.2.1 溶解度

        溶解度作為蛋白質(zhì)十分重要的一種功能特性,很大程度上決定了蛋白質(zhì)的乳化性、起泡性等性質(zhì),因此提高溶解度是蛋白質(zhì)改性中一個(gè)重要方面[28]。如圖5所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)產(chǎn)物在不同pH下的溶解度。由圖可知,在pH2.0~10.0范圍內(nèi),HPI及其水解產(chǎn)物的溶解度隨pH增大呈先下降后上升趨勢(shì),均在pH4.0時(shí)達(dá)到最小值,可知等電點(diǎn)在4.0附近。

        pH2.0-10.0范圍內(nèi),HPI水解產(chǎn)物在200MPa時(shí)的溶解度最高,其次是300MPa、100MPa和0.1MPa,均遠(yuǎn)高于改性前HPI的溶解度。溶解度的提升主要有兩方面的原因,一方面,酶解反應(yīng)使HPI致密的空間被破壞,分子發(fā)生重排,親水性區(qū)域暴露,改變了親水與疏水性基團(tuán)的排列與分布;另一方面,大分子蛋白變成小分子量肽段,使蛋白質(zhì)表面親水基團(tuán)與水的接觸面積增大,從而增大了酶解產(chǎn)物的溶解度[9]。由此可以看出,酶解反應(yīng)可以有效改善HPI溶解度且在酶解反應(yīng)中介入適當(dāng)?shù)膲毫稍鰪?qiáng)這種效應(yīng),但是,過高的壓力(300MPa)會(huì)使蛋白質(zhì)重新聚集而酶解效率降低,導(dǎo)致溶解度相對(duì)減小。

          

        2.2.2 起泡性

        蛋白質(zhì)溶液經(jīng)過高速剪切攪打后,分子會(huì)吸附到氣-液界面通過分子間相互作用形成粘彈性薄膜,進(jìn)而形成泡沫,其本質(zhì)是蛋白質(zhì)、水和空氣在一定條件下形成的特殊混合物[29]。如圖6所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)HPI起泡性及泡沫穩(wěn)定性的影響,由圖可知,HPI酶解產(chǎn)物的起泡性和泡沫穩(wěn)定性均呈先上升后下降的趨勢(shì),在壓力為200MPa處理時(shí)起泡性最大(49.0%±1.23%),當(dāng)壓力增加到300MPa時(shí),起泡性反而下降。起泡性的增加主要是由于HPI經(jīng)超高壓輔助酶解改性后,蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)展開程度變大,表面電荷增加,可溶性蛋白含量增多,從而使更多蛋白質(zhì)吸附到界面處,有助于液膜的形成[30,31]。然而,當(dāng)體系壓力增加到300MPa時(shí),可能是壓力過大導(dǎo)致蛋白質(zhì)重新聚集,使溶解度減小,分子間作用力減弱,因此起泡性相對(duì)變差。泡沫穩(wěn)定性在100MPa處理下達(dá)到最大,其增加也與溶解度有關(guān),當(dāng)體系中可溶性蛋白含量增加時(shí),有利于泡沫周圍黏性蛋白膜的形成,因此,泡沫穩(wěn)定性得以提高,200MPa及300MPa下泡沫穩(wěn)定性相對(duì)下降是由于隨著酶解進(jìn)程的增加,多肽鏈逐漸縮短且分子量減小導(dǎo)致的,這與Sara[32]等人的研究結(jié)果一致。

          

          

        2.2.3 乳化性及乳化穩(wěn)定性

        蛋白質(zhì)通常作為表面活性劑應(yīng)用于香腸、湯料等食品中,維持體系乳化結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,以延長(zhǎng)制品保存期。乳狀液和泡沫形成的原理非常相似,蛋白質(zhì)的溶解性在其中起著重要作用。如圖7所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響,由圖可知,與HPI相比,在0.1-300MPa處理下,HPI酶解產(chǎn)物乳化性顯著升高(P<0.05),200MPa下乳化性具有最大值為31.56±0.95m2/g??赡苁浅邏狠o助酶解反應(yīng)使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)改變,疏水基團(tuán)暴露,從而提高了分子柔性和表面疏水性,使蛋白質(zhì)分子更易吸附到油水界面[37];此外,酶解改性后HPI酶解產(chǎn)物溶解度明顯提升且肽段的產(chǎn)生也會(huì)使蛋白質(zhì)分子間電荷作用增強(qiáng),從而提升其乳化性。而300MPa時(shí)乳化性下降主要是因?yàn)閴毫υ龃髸r(shí),蛋白質(zhì)分子在氫鍵、疏水及靜電相互作用下重新形成聚集體,表面疏水性降低,因此乳化能力降低[11]。乳化穩(wěn)定性方面,不同壓力處理下HPI酶解產(chǎn)物乳化穩(wěn)定性均有所降低,可能與小分子多肽的產(chǎn)生,使降低界面張力的能力減弱,不能有效防止油滴聚集有關(guān),這與崔憲[33]等人的研究結(jié)果一致。綜合來看,蛋白質(zhì)的乳化能力與乳化穩(wěn)定性的好壞并不存在正相關(guān)。

          

          

        2.2.4 持水性

        蛋白質(zhì)的持水性是指蛋白質(zhì)在食品加工中與水的結(jié)合能力,蛋白質(zhì)分子表面親水性及疏水性強(qiáng)弱、分子的物理截留作用以及結(jié)構(gòu)都會(huì)影響持水性,持水性好壞可直接影響食品的嫩度和口感。如圖8所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物持水性的影響,由圖可知,HPI持水性為3.1±0.17g/g,壓力在0.1MPa、100MPa、200MPa、300MPa時(shí)酶解產(chǎn)物持水性分別為3.5±0.09g/g、2.7±0.08g/g、2.73±0.06g/g、2.9±0.08g/g,可見,0.1MPa處理下酶解產(chǎn)物持水性最大,高于改性前HPI,而100-300MPa處理時(shí)顯著下降(P<0.05),低于改性前HPI??赡艿脑蚴荋PI在蛋白酶的作用下肽鏈斷裂,極性基團(tuán)暴露,使部分氨基與羧基處于游離狀態(tài),蛋白質(zhì)分子通過極性基團(tuán)吸水,因而持水性增加。持水性下降的原因可能與蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)有關(guān),蛋白質(zhì)經(jīng)高壓酶解后,分子量和粘度逐漸降低,蛋白質(zhì)分子無序性程度增加,從而導(dǎo)致持水性下降[34],當(dāng)壓力再繼續(xù)增加時(shí),加強(qiáng)了蛋白的水合作用,又進(jìn)一步促進(jìn)水分吸收[35]。

          

        8 超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物持水性的影響

        2.2.5 持油性

        蛋白質(zhì)持油性是指蛋白質(zhì)吸附油脂的能力,將蛋白質(zhì)應(yīng)用于肉制品加工中可有效降低肉中油脂及汁液流失。如圖9所示為在最佳酶解條件下超高壓輔助酶解反應(yīng)對(duì)產(chǎn)物持油性的影響,研究表明,蛋白質(zhì)表面疏水性及其氨基酸側(cè)鏈殘基的非極性基團(tuán)可影響蛋白質(zhì)對(duì)油脂的吸附能力[36]。本實(shí)驗(yàn)中,蛋白質(zhì)持油性隨壓力的升高呈先上升后下降的趨勢(shì),HPI持油性為2.52±0.09g/g,0.1-300MPa時(shí)持油性分別為3.95±0.10g/g、4.01±0.13g/g、4.35±0.08g/g、3.26±0.05g/g,可見,改性后蛋白質(zhì)的持油性較改性前相比均有顯著提高(P<0.05),200MPa時(shí)達(dá)到最大值??赡艿脑蚴?,HPI經(jīng)酶解改性后溶解度增大,疏水基團(tuán)暴露,提高了蛋白質(zhì)與油脂的接觸率與親和力,因此其酶解產(chǎn)物的持油率有所提升,但當(dāng)壓力達(dá)到300MPa時(shí),蛋白質(zhì)在壓力的作用下發(fā)生聚集,溶解度因此降低且表面疏水基團(tuán)被蛋白質(zhì)聚集體所掩蓋,導(dǎo)致其持油能力下降,這與林素麗[37]等人研究結(jié)果一致。

          

        3 結(jié)論

        本研究在0.1-300MPa超高壓下輔助復(fù)合蛋白酶對(duì)HPI進(jìn)行酶解改性,以溶解度及水解度為判定指標(biāo),得到最佳改性條件為:加酶量5000U/g、改性pH8.0、改性溫度55℃、改性時(shí)間50min。在此條件下酶解后的蛋白溶解性顯著提升(P<0.05),當(dāng)壓力為200MPa時(shí)溶解性最高,隨后下降。蛋白起泡性有所提升,并在200MPa時(shí)達(dá)到最大,而泡沫穩(wěn)定性在100MPa處理下最高,與起泡性變化趨勢(shì)并不完全一致。經(jīng)酶解后HPI的乳化性隨壓力升高逐漸增大而后減小,當(dāng)壓力為200MPa時(shí)其乳化性最高,而乳化穩(wěn)定性存在不同程度的下降。由持水性測(cè)定結(jié)果可知,0.1MPa處理時(shí)HPI持水性最大且高于HPI,隨著壓力的增加,持水性反而下降。由持油性測(cè)定結(jié)果可知,改性后蛋白質(zhì)的持油性較HPI相比均有顯著提高(P<0.05),200MPa時(shí)達(dá)到最大值。綜上所述,當(dāng)超高壓壓力在200MPa時(shí)對(duì)HPI酶解改性具有較好的促進(jìn)作用,能夠明顯改善HPI的理化性質(zhì)。

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