摘 要:為了解析HcPGK基因的功能,本研究以紅麻保持系花藥為材料,克隆HcPGK基因,利用生物信息學對基因序列進行理化性質(zhì)分析,并對該基因的表達模式進行檢測。結(jié)果表明,HcPGK基因最大開放閱讀框(ORF)為1203bp,編碼400個氨基酸。生物信息學結(jié)果表明,PGK蛋白屬于磷酸甘油激酶家族,其等電點為6.06,主要定位在葉綠體上;通過系統(tǒng)進化分析發(fā)現(xiàn)紅麻和木槿的PGK蛋白序列在進化分支中關系密切。組織特異性表達結(jié)果表明,HcPGK基因在葉片中表達量最高,且顯著高于根和葉,而該基因在紅麻的根和莖中的表達量無顯著差異。自激活實驗分析表明,該基因不存在自激活現(xiàn)象,可用于酵母雙雜交實驗。本研究為解析HcPGK基因的功能提供一定的參考。
關鍵詞:紅麻;HcPGK基因;基因克隆;生物信息學分析
紅麻(Hibiscus cannabinus L.)是錦葵科木槿屬的一年生纖維作物,具有耐鹽、抗旱和耐重金屬等特性。紅麻的莖稈和韌皮部纖維主要用于制作紙制品、建筑材料、牲畜飼料、吸附劑以及生物質(zhì)能源等(Chen et al.,2019;Fan et al.,2019)。由于紅麻具有巨大的發(fā)展?jié)摿?,全球的紅麻纖維需求量巨大且每年在持續(xù)增長(劉正初,2007;孫進昌等,2010)。種植紅麻不僅能充分利用劣地,在改善土壤和環(huán)境,減少水土流失,具有深遠的環(huán)保意義,而且能夠有效解決我國優(yōu)質(zhì)纖維原料的不足的問題(陳安國等,2011)。
磷酸甘油酸激酶(Phosphoglycerate kinase,PGK)是糖酵解途徑(EMP)中的限速酶,對于生物體代謝具有重要作用(郭楠,2014)。在高等植物中主要有兩類PGK,一種被定位于細胞溶質(zhì)(cPGK),另一種定位于質(zhì)體中(pPGK)。在糖酵解中,cPGK的主要功能是催化底物水平磷酸化產(chǎn)生ATP產(chǎn)生,而pPGK主要參與光合碳還原過程和葉綠體糖酵解過程(郭楠,2014)。無論是糖酵解糖異生還是光合作用(碳固定),磷酸甘油酸激酶催化的糖酵解反應都是將一個磷酸基從1,3-二磷酸甘油酸的?;姿徂D(zhuǎn)移到ADP上,從而形成ATP和3-磷酸甘油酸(3-PGA)(Matsubara et al.,2011)。糖酵解過程中ATP的產(chǎn)生需要已糖激酶和磷酸甘油酸激酶的催化,PGK作為所需的兩種酶之一,是一種典型的鉸鏈彎曲酶(Szabo et al.,2008),具有與己糖激酶(HK)、磷酸果糖激酶(PFK)等代謝激酶類似的底物輔助結(jié)構(gòu)域閉合機(Massange-Sanchez et al.,2020)。每個區(qū)域均由一個中心β層組成,中間夾著兩個由一個靈活的螺旋鉸接在一起的α螺旋層,它們閉合以實現(xiàn)催化作用(Zerrad et al.,2011;Zheng et al.,2012)。
PGK基因在不同植物中已被廣泛研究,它們的功能差異很大。PGKc對維持擬南芥根內(nèi)細胞的pH穩(wěn)態(tài)至關重要(王曉國等,2021)。在擬南芥中發(fā)現(xiàn)了3個PGK基因,分別為At3g12780(AtPGK1)、At1g56190 (AtPGK2)、At1g79550(AtPGK3)(Massange et al.,2020)。AtPGK1僅在于光合組織的葉綠體中表達,AtPGK2在光合和非光合細胞的葉綠體/質(zhì)體中表達,AtPGK3在胞質(zhì)中表達。其中,高鹽度可顯著誘導AtPGK2,且AtPGK2的過表達轉(zhuǎn)基因擬南芥增強了對鹽脅迫的耐受性(Liu et al.,2015),AtPGK2突變體中會出現(xiàn)程序化細胞死亡(programmed cell death,PCD)的表型,并且隨著植株的生長表現(xiàn)得越來越明顯,最終無法開花結(jié)果(黃小貞等,2017)。植物 PGK可能參與蔗糖和淀粉間碳分配的調(diào)節(jié)等過程,也可參與日葵胚胎發(fā)育階段的脂質(zhì)合成進而導致含油量增加(Adrian Troncoso-Ponce et al.,2009)。PGK轉(zhuǎn)基因油菜發(fā)育種子中含油量也顯著提高(Tan et al.,2011)。PGK基因還可以調(diào)節(jié)植物生理代謝(Rosa et al.,2018)。在紅麻中,目前只發(fā)現(xiàn)了一種PGK基因,其功能還未被研究過,有待深入研究。
本課題組前期對紅麻細胞質(zhì)雄性不育系P3A和及其保持系P3B的花藥進行了轉(zhuǎn)錄組和蛋白質(zhì)組學分析,發(fā)現(xiàn)HcPGK基因的相對表達量及其蛋白的乙?;揎椝皆赑3B中都顯著高于P3A(Chen et al.,2019),推測HcPGK基因能在紅麻細胞質(zhì)雄性不育的發(fā)生過程中發(fā)生重要作用。為了解析HcPGK基因的功能,本研究克隆了紅麻HcPGK基因的,并對其進行生物信息學分析,檢測其在紅麻各組織的表達量,旨在為研究紅麻HcPGK基因的功能提供一定的參考。
1結(jié)果與分析
1.1紅麻HcPGK基因的克隆
提取紅麻保持系P3B花藥中的總RNA,經(jīng)反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。以此為模板,HcPGK-F和HcPGK-R為上下游引物,進行PCR擴增,利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產(chǎn)物(圖1)。測序結(jié)果顯示HcPGK基因大小為1203bp,與預測分子量大小一致。紅麻HcPGK基因號為Hc.13G000800.t1,最大開放閱讀框(ORF)編碼400個氨基酸(圖2),該蛋白的結(jié)構(gòu)域為最長ORF全長。
圖1 紅麻HcPGK基因擴增檢測
圖2 紅麻HcPGK基因的預測蛋白序列分析
1.2紅麻HcPGK基因的生物信息學分析
1.2.1紅麻HcPGK蛋白理化性質(zhì)分析及功能域預測
HcPGK蛋白含有400個氨基酸,預測相對分子量為42.35kDa,等電點為6.06。HcPGK蛋白的功能域預測結(jié)果如圖3所示,HcPGK蛋白屬于磷酸甘油激酶家族,其功能域預測結(jié)果如圖3所示。利用網(wǎng)站對HcPGK蛋白進行預測,預測結(jié)果顯示該蛋白定位在葉綠體上。
圖3 紅麻HcPGK蛋白功能域分析
1.2.2紅麻HcPGK高級蛋白結(jié)構(gòu)預測
利用sopma(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)和expasys WISS模型(https://www.swissmodel.expasy.org/)預測了HcPGK蛋白質(zhì)的二級(圖4)和三級(圖5)結(jié)構(gòu),結(jié)果表明,HcPGK蛋白多肽鏈中含有47.88%的α-螺旋,15.71%的延伸鏈,8.98%的β轉(zhuǎn)角,27.43%的無規(guī)則卷曲。由于α-螺旋占比比較多,有利于PGK蛋白穩(wěn)定發(fā)揮作用。
圖4 紅麻HcPGK蛋白的二級結(jié)構(gòu)分析
紅麻HcPGK蛋白的三級結(jié)構(gòu)預測如圖5所示,同源建模的模板來自嗜熱脂肪芽孢桿菌的3-磷酸甘油酸激酶ADP復合物的3-磷酸甘油酸激酶,序列標識度為60.57%,置信度為0.85,因此,預測結(jié)果比較可信。
圖5 紅麻HcPGK蛋白的三級結(jié)構(gòu)分析
1.2.3紅麻HcPGK氨基酸同源性分析及進化樹構(gòu)建
利用BlastP對HcPGK的氨基酸序列進行比較,篩選出同源性較高的序列(圖6)。經(jīng)過DNAMAN比對后,采用MEGA7.0軟件構(gòu)建進化樹。結(jié)果表明,紅麻和木槿的PGK蛋白序列在進化分支中關系密切(圖7)。
圖6 紅麻與其他植物的HcPGK氨基酸序列多重比對
圖7 不同植物中PGK的系統(tǒng)進化樹
1.3紅麻HcPGK基因基因組織特異性表達分析
對紅麻幼苗時期的根、莖、葉部位進行熒光定量PCR分析,結(jié)果表明,HcPGK在根和莖的的表達量幾乎一致,在葉中的表達量最高,顯著高于根和莖(圖8)。
圖8 紅麻各組織中HcPGK相對表達水平定量分析
注:不同小寫字母表示之間差異顯著(P<0.05)
1.4重組質(zhì)粒pGBKT7-HcPGK的自激活效應檢測
將重組質(zhì)粒pGBKT7-HcPGK、PGBKT7空載質(zhì)粒以及PGBKT7-53和PGADT7-T(陽性對照)轉(zhuǎn)化酵母Y2HGold感受細胞點板后發(fā)現(xiàn),它們均能在SD/-Trp板上生長,但是只有陽性對照PGBKT7-53和PGADT7-T能在SD/-Trp/+X-α-gal/+AbA平板上生長,且菌落為藍色,因此,重組質(zhì)粒pGBKT7-HcPGK不存在自激活效應(圖9)。后續(xù)可用酵母雙雜技術篩選與HcPGK蛋白互作的蛋白。
圖9 HcPGK的轉(zhuǎn)錄自激活檢測
注:1:PGBKT7;2:陽性對照PGBKT7-53和PGADT7-T;3:pGBKT7-HcPGK
2討論
PGK都包含有Phosphoglycerate kinase結(jié)構(gòu)域(郭楠,2014),本研究克隆了HcPGK基因,并通過生物信息學分析對其進行分析和預測。HcPGK基因cDNA全長為1203bp,編碼400個氨基酸,其編碼蛋白的分子量為42.35kD,等電點為6.06,屬于磷酸甘油激酶家族,與其他物種的PGK蛋白的氨基酸序列高度相似。
在高等植物中,PGK基因主要參與光合碳還原和葉綠體糖酵解過程(郭楠,2014)。在煙草、甘藍型油菜和擬南芥中,PGK基因在不同組織中存在差異表達(郭楠,2014;Huang et al.,2017)。本研究發(fā)現(xiàn)HcPGK基因在根和莖中的表達量較低且無顯著差異,但是在葉中的表達量較高,說明HcPGK在紅麻中的表達也具有一定的組織特異性。此外,亞細胞定位預測HcPGK蛋白表達位置于葉綠體中,這與ZmPgk4蛋白在玉米中的定位位置一致(Massange et al.,2020),而PGK蛋白能催化ATP的產(chǎn)生,故推測這與HcPGK基因在葉綠體基質(zhì)中參與的光合碳循環(huán)的原因有關(郭楠,2014;Massange et al.,2020)。HcPGK基因不會發(fā)生轉(zhuǎn)錄自激活現(xiàn)象,因而在紅麻體內(nèi)只有特定條件下才能發(fā)揮作用,符合酶的特性。
蛋白質(zhì)乙酰化修飾是在乙?;D(zhuǎn)移酶的作用下發(fā)生的一種可逆的蛋白翻譯后修飾,可以通過改變蛋白的理化性質(zhì)和構(gòu)象,從而調(diào)控蛋白的結(jié)合能力與功能(Choudhary et al.,2009;Kahn,1995)。本課題組前期發(fā)現(xiàn)花藥中HcPGK基因的相對表達量及其蛋白的乙?;揎椝皆诒3窒礟3B中都顯著高于不育系P3A,說明PGK蛋白乙?;揎椏赡苡绊懥思t麻雄性不育的發(fā)生。據(jù)報道甘藍型油菜中,BnPGK在保持系中花蕾的表達量顯著高于不育系,這可能與雄性不育系花蕾敗育有關(郭楠,2014)。因此推測在紅麻中蛋白乙?;揎棇ρ芯?/font>HcPGK基因的表達調(diào)控以及調(diào)控PGK酶活性導致細胞質(zhì)雄性不育的形成具有重要作用。本研究發(fā)現(xiàn)HcPGK沒有自激活效應,為利用酵母雙雜技術等技術尋找與HcPGK相互作用蛋白并進行較為深入的分子實驗研究奠定了基礎。
本研究僅做了HcPGK基因在紅麻不育系P3B的根莖葉的特異性表達分析,為了研究蛋白乙酰化修飾是否對PGK蛋白功能產(chǎn)生影響以及是否與細胞質(zhì)雄性不育有關,下一步將收集紅麻不育系P3A和保持系p3B的敗育期花藥,并檢測HcPGK基因在這兩系中的表達情況,再對其進行不育機理的研究,這些后續(xù)的研究具有重要的意義。
3材料與方法
3.1材料
本試驗所用紅麻材料為紅麻保持系P3B,紅麻植株種植于廣西大學試驗田,種植期間進行常規(guī)的田間管理。
3.2紅麻總RNA提取與第一鏈cDNA的合成
使用RNA提取試劑盒(Vazyme,RC101)提取P3B的總RNA。用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的完整性,并用NanoDrop ND-100(凱樂博(北京)科技發(fā)展有限公司)檢測RNA的濃度和純度。使用諾唯贊反轉(zhuǎn)錄試劑盒(R312-01)合成第一鏈cDNA,并置于-20℃保存?zhèn)溆谩?/font>
3.3紅麻HcPGK基因的擴增
根據(jù)紅麻轉(zhuǎn)錄組的序列,利用Primer Premier5.0軟件設計擴增HcPGK全長的特異性引物(表1),以P3B花藥cDNA為模板,采用高保真Mix(Vazyme,P520)進行擴增,反應體系參照P520說明書,退火溫度為58度,擴增產(chǎn)物電泳后切膠回收。
3.4紅麻HcPGK基因的克隆載體構(gòu)建
將PCR膠回收產(chǎn)物連接到pEASY-Blunt克隆載體上,體系為5μL,25℃反應10min,之后將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,37℃培養(yǎng)14h,挑取單克隆在液體LB中擴繁,6h后進行PCR鑒定,使用引物為載體上的引物M13F/R(表1),將有目的條帶的菌液送往華大公司進行測序,使用DNAMA比對測序結(jié)果,將結(jié)果正確的菌液加50%甘油,于-20℃保存。
3.5紅麻HcPGK基因的生物信息學分析
把目的基因序列提交到NCBI網(wǎng)站進行基因結(jié)構(gòu)預測,進行DNAMAN軟序列比對,利用Mega7軟件鄰居連接(neighbor joining,NJ)構(gòu)建進化樹。利用ExPASY在線工具分析蛋白的分子量和等電點。利用在線網(wǎng)站對蛋白質(zhì)的跨膜結(jié)構(gòu)、信號和親水性多肽進行分析。利用sopma網(wǎng)站和expasys WISS模型預測蛋白質(zhì)的二級和三級結(jié)構(gòu)結(jié)果。在http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/plant-multi/網(wǎng)站對HcPGK進行亞細胞定位預測。
3.6紅麻HcPGK基因不同組織表達模式分析
分別取紅麻幼苗時期的根、莖、葉,用試劑盒提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。根據(jù)基因的全長ORF序列設計引物熒光定量PCR引物(表1),以紅麻Histone3為內(nèi)參基因,利用2-ΔΔCT 法(Li et al.,2021)計算目的基因的相對表達量。
3.7pGBKT7-HcPGK的構(gòu)建
根據(jù)HcPGK編碼序列設計帶有pGBKT7載體序列信息引物HcPGK- pGBKT7 (表1),以重組質(zhì)粒HcPGK-blunt載體為模板,PCR擴增得到含有pGBKT7載體同源臂的目的序列,用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ單酶切pGBKT7空載體,膠回收目的序列和線性化載體,用同源重組法將其連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,挑選單克隆,進行PCR鑒定,將有條帶的菌液送往華大公司測序,將測序正確的菌液擴繁,提質(zhì)粒,-20℃保存。
3.8重組質(zhì)粒pGBKT7-HcPGK自激活效應檢測
將重組質(zhì)粒pGBKT7-HcPGK、PGBKT7空載質(zhì)粒以及PGBKT7-53和PGADT7-T(陽性對照)轉(zhuǎn)化酵母Y2HGold感受細胞。將轉(zhuǎn)化得到的單克隆酵母進行菌液PCR鑒定,將正確的菌液分別稀釋1、100、1000倍,取2μL點樣在SD/-Trp/+X-α-gal/+AbA平板上,30℃培養(yǎng)3~5d。
表1 實驗所用引物
引物名稱 Primer name |
引物序列(5'-3') Primer sequence(5'-3') |
功能 Function |
HcPGK-F |
ATGGCTACAAAGAAGAGCGTCG |
基因克隆 Gene clone |
|
TGCGTCATCAAGAGCAAGGAC |
|
PGK-qPCR-F |
TGTGGCAAATCCCAAGAAGC |
熒光定量 qPCR |
PGK-qPCR-R |
GGCAGCAAGAGAGAGACCCCT |
|
HcPGK- pGBKT7-F HcPGK- pGBKT7-R M13F M13R H3 (Histone3)-F H3 (Histone3)-R |
ATATGGCCATGGAGGCCGAATTCATGGCTACAAAGAAGAGCGTCG GTCGACGGATCCCCGGGAATTCTGCGTCATCAAGAGCAAGGAC GAGCGGATAACAATTTCACACAGG CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC GTGGAGTCAAGAAGCCTCACAG ATGGCTCTGGAAACGCAAA |
載體構(gòu)建 vector construction PCR檢測 PCR test 熒光定量 qPCR |
參考文獻
[1]Adrian Troncoso-Ponce M.,Kruger N J.,Ratcliffe G.,Garces R,and Martinez-Force E.,2009,Characterization of glycolytic initial metabolites and enzyme activities in developing sunflower(Helianthus annuus L.)seeds,Phytochemistry.,70(9):1117-1122.
[2]Bringloe D H.,Rao S K.,Dyer T A.,Raines C A,and Bradbeer J W.,1996,Differential gene expression of chloroplast and cytosolic phosphoglycerate kinase in tobacco.,Plant Molecular Biology,30(3):637-640.
[3]Chen A.G.,Li D.F.,Li J.J.,and Tang H.J.,2011,To Develop “Low-Carbon Economy”,Kenaf is Highly Promising.,Zhongguo Maye Kexue(Plant Fiber Sciences in China),33(1):5.(陳安國,李德芳,李建軍,唐慧娟,2011,發(fā)展"低碳經(jīng)濟",紅麻大有可為,中國麻業(yè)科學,33(1):5.)
[4]Chen P.,Wei F.,Li R.,Li Z Q.,Kashif M H,and Zhou R Y.,2019,Comparative acetylomic analysis reveals differentially acetylated proteins regulating anther and pollen development in kenaf cytoplasmic male sterility line.,Physiologia Plantarum,166(4):960-978.
[5]Choudhary C.,Kumar C.,Gnad F.,Nielsen M L.,Rehman M.,Walther T C.,Olsen J V,and Mann M.,2009,Lysine Acetylation Targets Protein Complexes and Co-Regulates Major Cellular Functions.,Science,325(5942):834-840.
[6]Fan W.,Danfeng T.,Zengqiang L.,Haneef K M.,Aziz K.,Hai L.,Ruixing J,and Peng C.,2019,Molecular cloning and subcellular localization of six HDACs and their roles in response to salt and drought stress in kenaf (Hibiscus cannabinus L.).,Biological research,52(1).
[7]Guo N.,Zhao J.,Gao T.,Bai R.,Huang X.,Lu J.,and Zhang T.,2014,Cloning and Expression Analysis of PGK Gene in Brassica napus.,Xibei Zhiwu Xuebao (Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica),34(11):2188-2193.(郭楠,趙敬會,高天姝,白瑞英,黃興琳,陸俊杏,張濤,2014,甘藍型油菜PGK基因的克隆與表達分析,西北植物學報,34(11):6)
[8]Huang X.Z.,Zhao D.C.,2017,Functional analysis of PGK gene family in Arabidopsis.,Shandi Nongye Shengwu Xuebao(Journal of Mountain Agriculture and Biology)36(1):7.(黃小貞,趙懿琛,2017,擬南芥PGK基因家族功能的初步分析,山地農(nóng)業(yè)生物學報,36(1):7.)
[9]Kahn P.,1995,Molecular Biology:From Genome to Proteome:Looking at a Cell's Proteins.,Science,270 (5235) ,pp.369-370
[10]Liu D.,Li W.,Cheng J,and Hou L.,2015,AtPGK2,a member of PGKs gene family in Arabidopsis,has a positive role in salt stress tolerance.,Plant Cell Tissue & Organ Culture,120(1):251-262.
[11]Li Z.,Hu Y.,Chang M.,Kashif M.H.,Tang M.,Luo D.,Cao S.,Lu H.,Zhang W.,Huang Z.,Yue J.,and Chen P.,2021,5-azacytidine pre-treatment alters DNA methylation levels and induces genes responsive to salt stress in kenaf (Hibiscus cannabinus L.).,Chemosphere,271.
[12]Liu Z.C.,2007.,Foreground Analysis of Herbaceous Fiber Industry with Scientific Development View in China.,Zhongguo Maye Kexue (Plant Fiber Sciences in China),29(2):4.(劉正初,2007,用科學發(fā)展觀看我國草本纖維產(chǎn)業(yè)前景,中國麻業(yè)科學,29(2):4.)
[13]Massange-Sanchez J A.,Casados-Vazquez L E.,Juarez-Colunga S.,Sawers R J H,and Tiessen A.,2020,The Phosphoglycerate Kinase (PGK) Gene Family of Maize (Zea mays var.B73).,Plants-Basel,9(12).
[14]Matsubara K.,Yokooji Y.,Atomi H,and Imanaka T.,2011,Biochemical and genetic characterization of the three metabolic routes in Thermococcus kodakarensis linking glyceraldehyde 3-phosphate and 3-phosphoglycerate.,Molecular Microbiology,81(5):1300-1312.
[15]Rosa-Tellez S.,Djoro Anoman A.,Flores-Tornero M.,Toujani W.,Alseek S.,Fernie A R.,Nebauer S G.,Munoz-Bertomeu J.,Segura J,and Ros R.,2018,Phosphoglycerate Kinases Are Co-Regulated to Adjust Metabolism and to Optimize Growth.,Plant Physiology,176(2):1182-1198.
[16]Sun J.C.,Peng Y..D.,and Pi S.,2010,Study on the Use and Development Prospect of Bast Fiber Crops.,Nongchanpin Jiagong ·Xuekan (Academic Periodical of Farm Products Processing),(3):3.(孫進昌,彭源德,皮珊,2010,麻類作物的用途及發(fā)展前景,農(nóng)產(chǎn)品加工學刊,(3):3)
[17]Szabo J.,Varga A.,Flachner B.,Konarev P V.,Svergun D I.,Zavodszky P,and Vas M.,2008,Communication between the nucleotide site and the main molecular hinge of 3-phosphoglycerate kinase.,Biochemistry,47(26):6735-6744.
[18]Tan H.,Yang X.,Zhang F.,Zheng X.,Qu C.,Mu J.,Fu F.,Li J.,Guan R.,Zhang H.,Wang G,and Zuo J.,2011,Enhanced Seed Oil Production in Canola by Conditional Expression of Brassica napus LEAFY COTYLEDON1 and LEC1-LIKE in Developing Seeds.,Plant Physiology,156(3):1577-1588.
[19]Wang X,G.,Gong P,P.,Li S ,N.,Chen W.,Li R ,Z.,Bian J,H.,Wang W,F.,Guan Y,F.,2021,Cytosolic phosphoglycerate kinase (PGKc) plays a role in regulating intracellular pH homeostasis in Arabidopsis thaliana.,Zhiwu Shengli Xuebao(Plant Physiology Journal),57(10):8.(王曉國,龔萍萍,厲蘇寧,陳偉,李瑞姿,卞江虎,王文斐,關躍峰,2021,擬南芥胞質(zhì)磷酸甘油酸激酶(PGKc)對細胞pH穩(wěn)態(tài)平衡的影響,植物生理學報,57(10):8.)
[20]Zerrad L.,Merli A.,Schroeder G F.,Varga A.,Graczer E.,Pernot P.,Round A.,Vas M,and Bowler M.W.,2011,A Spring-loaded Release Mechanism Regulates Domain Movement and Catalysis in Phosphoglycerate Kinase.,Journal of Biological Chemistry,286(16):14040-14048.
[21]Zheng H.,Filippova E V.,Tkaczuk K L.,Dworzynski P.,Chruszcz M.,Porebski P J.,Wawrzak Z.,Onopriyenko O.,Kudritska M.,Grimshaw S.,Savchenko A.,Anderson W F.,and Minor W.,2012,Crystal structures of putative phosphoglycerate kinases fromB.Anthracis and C.jejuni.,Journal of structural and functional genomics,13(1):15-26.
文章摘自:黃震,吳啟境,陳燦妮,羅登杰,潘姣,廖長君,李赟,陳鵬.紅麻磷酸甘油激酶基因(HcPGK)的克隆及生物信息學分析[J/OL].分子植物育種:1-14[2022-07-11].
