摘 要:苧麻是中國特有的韌皮纖維作物,炭疽病是苧麻重要病害之一,影響苧麻纖維產(chǎn)量和品質(zhì)。 試驗(yàn)采用植物病原真菌傳統(tǒng)分離法,對采自湖北省、湖南省和江西省苧麻主產(chǎn)區(qū)感染炭疽病的苧麻葉片進(jìn)行炭疽病病原菌的分離,并通過對病原菌形態(tài)特征觀察、致病性測定、核糖體內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)序列(internal transcribed spacers,ITS)和 β-微管蛋白序列(β-tubulin,TUB2)的克隆和分析,對引起苧麻炭疽病的病原進(jìn)行鑒定。 經(jīng)形態(tài)學(xué)和分子生物學(xué)結(jié)合分析,確定引起我國苧麻炭疽病的病原主要有膠孢炭疽菌(Colletotrichum gloeosporioides)、果生炭疽菌(C. fructicola)、暹羅炭疽菌(C. siamense)和希金斯炭疽菌(C. higginsianum)。 根據(jù)新的炭疽菌種的分類方法,苧麻炭疽病病原分屬于膠孢炭疽菌復(fù)合群(C. gloeosporioides complex) 和毀滅炭疽菌(C. destructivum com?plex)復(fù)合群。 研究結(jié)果為研究苧麻炭疽病菌的生物學(xué)特性、流行規(guī)律以及苧麻抗炭疽病分子育種研究和有效綠色防治策略提供理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞:苧麻;炭疽病;刺盤孢屬;病原分離;病原鑒定
苧麻(Boehmeria nivea L. Gaud)是蕁麻科(Urticaceae)苧麻屬(Boehmeria)多年生宿根性纖維作物,在我國有著悠久的種植歷史。 我國苧麻種質(zhì)資源和遺傳多樣性豐富,種植面積和原料產(chǎn)量在世界上處于優(yōu)勢地位[1]。 苧麻炭疽病是苧麻上經(jīng)常發(fā)生的主要病害之一,給苧麻生產(chǎn)帶來嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失[2]。 該病害在我國長江流域以南各省麻區(qū)均有發(fā)生,發(fā)病率達(dá) 20% ~40%,感病后葉片上產(chǎn)生典型病斑進(jìn)而影響作物生長,發(fā)病嚴(yán)重的麻園纖維產(chǎn)量減產(chǎn)達(dá) l0%以上[3],并且刮制后的原麻有紅褐色斑點(diǎn),極大影響苧麻纖維的品質(zhì)[4]。 長期以來,我國苧麻在種質(zhì)資源創(chuàng)新與鑒定、品種篩選、育種與繁育技術(shù)研究[5-8]以及基于 UAV-RGB 遙感系統(tǒng)估算苧麻產(chǎn)量等方面均取得重大進(jìn)展[9-10],但在苧麻炭疽病病害及其病原菌的研究方面還比較薄弱。 1914 年日本學(xué)者 Sawada 在中國臺灣首次對該病菌進(jìn)行分離和形態(tài)學(xué)觀察,并將苧麻炭疽病菌命名為 C. boehmeriae Sawada(以寄主來源和其名字命名)[11-12]。 二十世紀(jì)八九十年代,我國苧麻研究專家對苧麻炭疽病的癥狀及各個生育期病害發(fā)生的特點(diǎn)、侵染源、發(fā)生規(guī)律等進(jìn)行了系統(tǒng)性研究,提出了苧麻炭疽病的防治措施,為苧麻炭疽病害的防治提供了指導(dǎo)[3-4, 13-14]。 至今,國內(nèi)外關(guān)于苧麻炭疽病病原菌的研究報道仍較少。 在以往苧麻炭疽病的田間調(diào)查、病害防治、苧麻品種抗性檢測和對苧麻炭疽菌的研究報道中,根據(jù)寄主來源和發(fā)現(xiàn)者命名的“Colletotrichum boehmeriae Sawada”一直作為苧麻炭疽病菌的病原,但其不能說明苧麻炭疽菌真正的病原和分離地位。 準(zhǔn)確鑒定引起苧麻炭疽病的病原菌是研究病菌生物學(xué)特性、發(fā)生規(guī)律和開展病害防治的基礎(chǔ)。
本研究通過采集苧麻炭疽病感病的葉片,采用傳統(tǒng)組織分離法進(jìn)行病原真菌的培養(yǎng)和分離,依據(jù)病菌的形態(tài)學(xué)特征、致病性測定、分子生物學(xué)和形態(tài)學(xué)結(jié)合的方法對引起苧麻炭疽病的病原菌進(jìn)行鑒定,旨在明確引起苧麻炭疽病的病原菌。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
從湖北省武漢市華中農(nóng)業(yè)大學(xué)苧麻材料圃、湖北省咸寧市苧麻基地大田、中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院麻類研究所苧麻材料圃(湖南長沙)和江西省宜春市農(nóng)科所苧麻材料圃等地,采集癥狀典型的苧麻炭疽病病葉,用于病原菌的分離。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 病菌分離與純化
應(yīng)用常規(guī)植物病原菌的分離法進(jìn)行病菌的分離[15-16]。 在無菌操作臺上,切取病健交界處約2 mm×2 mm 的病組織,先用滅菌水沖洗干凈,再用 75%酒精消毒 1 min,5%次氯酸鈉消毒 3 min,最后用無菌水沖洗 3 遍,將消毒好的病組織置于 PDA 平板上,28 ℃下暗培養(yǎng) 3~4 d。 待菌落長出后,重復(fù)純化 2~3 次。 將分離的菌株保存在 PDA 平板中,4 ℃儲存?zhèn)溆谩?/font>
1.2.2 致病性檢測
分生孢子液接種:選取新鮮健康的苧麻葉片(華苧 4 號),放入鋪有吸水紙的盤中擺放整齊,吸水紙經(jīng)滅菌水滋潤。 在每個葉片上滴加分生孢子液,每片葉片接 10 處,每處接種 6 μL ( 1 ×106 個/ mL),3 個重復(fù),以清水作為對照組,用保鮮膜封盤并置于 28 ℃ 恒溫培養(yǎng)箱中 12 h 光暗交替培養(yǎng),連續(xù)觀察 10 d,記錄葉片發(fā)病情況。
菌絲塊接種:葉片選取同以上分生孢子液接種。 PDA 平板上活化好的菌落用打孔器( d =6 mm)打取菌絲塊。 將菌絲塊面朝下接種到葉片上,每片葉片接 5 ~ 6 個菌絲塊,3 個重復(fù),清水作為對照,培養(yǎng)條件和觀察方法同分生孢子液接種。 葉片發(fā)病后從病斑上再次分離病原菌,比較再分離菌株與接種菌株的一致性,完成柯赫氏法則的驗(yàn)證。
1.2.3 病原菌的鑒定
形態(tài)學(xué)鑒定:將菌絲塊接種到 PDA 平板上,在 28 ℃培養(yǎng)箱里黑暗培養(yǎng),3 d 后觀察并記錄菌落特征,主要包括菌落顏色、形態(tài)和生長情況。 在顯微鏡下觀察分生孢子、附著胞及孢子梗的形態(tài),用顯微鏡及標(biāo)尺測量分生孢子的大小,并計算分生孢子的長寬比例,查閱真菌分離鑒定工具書,初步判定病菌的種類。
分子生物學(xué)鑒定:采用 CTAB 法提取病原菌 DNA,用真菌核糖體內(nèi)部轉(zhuǎn)錄序列 ITS 通用引物ITS1(5’-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3’)和 ITS4(5’-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’)[17]、β-微管蛋白基因( β -tubulin,TUB2) 的 PCR 擴(kuò)增引物 T1 ( 5’-AACATGCGTGAGATTGTAAGT - 3’) 和βt2b (5’-ACCCTCAGTGTAGTGACCCTTGGC-3’)[18]對目的基因區(qū)域進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增。 將 PCR 產(chǎn)物純化后進(jìn)行 T 載體的連接和大腸桿菌的轉(zhuǎn)化,并對質(zhì)粒進(jìn)行測序。 將所測得的序列在 NCBI 網(wǎng)站(http: / / www.ncbi.nlm.nih.gov)進(jìn)行同源性比較,以近緣菌株構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,確定其分類地位。
2 結(jié)果和分析
2.1 苧麻炭疽病的田間癥狀
根據(jù)苧麻炭疽病田間癥狀觀察,從我國 3 個省份(湖北、湖南、江西)主要苧麻產(chǎn)區(qū)采集具有苧麻炭疽病癥狀的葉片。 對田間癥狀和采集的葉片進(jìn)行觀察,發(fā)現(xiàn)苧麻炭疽病主要癥狀包括:染病葉片呈現(xiàn)典型的圓形病斑,病斑直徑 1~3 mm,病斑邊緣黑色,中央褐色,可擴(kuò)展,嚴(yán)重的呈中間凹陷壞死癥狀(圖 1-A~ C);葉片上具有大量小圓斑癥狀,病斑直徑<1 mm,病斑中央灰白色,邊沿深褐色,擴(kuò)展有限(圖 1-D);葉片上具有大量小圓斑癥狀,病斑直徑<1 mm,可擴(kuò)展成片(圖 1-E);葉片上具有黑色大斑,直徑>5 mm,病斑擴(kuò)展成片(圖 1-F)。
2.2 苧麻炭疽病病原菌致病性測定結(jié)果
本試驗(yàn)共分離 89 個菌株,選取形態(tài)有差異且能在 PDA 培養(yǎng)基上直接產(chǎn)生或者切斷菌絲后能誘導(dǎo)產(chǎn)生橘紅色分生孢子的 23 個菌株進(jìn)行致病性測定。 先采用分生孢子接種法對菌株的致病性進(jìn)行測定,結(jié)果顯示,菌株大致有強(qiáng)致病性、弱致病性和無致病性 3 類(圖 2)。 23 個菌株中有4個菌株可以引起“華苧 4 號”發(fā)病,其中,強(qiáng)致病性菌株占總測試菌株的 61%。 強(qiáng)致病性菌株接種葉片 3 d 后,葉片上接種點(diǎn)開始出現(xiàn)病斑,隨著培養(yǎng)時間的延長病斑變大,擴(kuò)大成片,最后整個葉片
退綠,腐爛(圖 2-A1~A4);第二類弱致病性菌株,接種葉片 3 d 后出現(xiàn)病斑,隨著培養(yǎng)時間的延長,壞死部位沒有繼續(xù)惡化,10 d 后葉片仍然完好(圖 2-B1 ~ B4);第三類菌株接種后葉片沒有受感
染,葉片表面未見任何病斑(圖 2-C1~ C4 )。
將致病性強(qiáng)的菌株用菌絲片法再次進(jìn)行致病性檢測。 結(jié)果顯示,接種 3 d 后接種處開始發(fā)病,初為褐色斑點(diǎn)(圖 3-A),接種 7 d 后病斑顏色加深并擴(kuò)展為圓形,有的病斑連成片導(dǎo)致葉片腐爛(圖 3-B)。 從病組織再分離的病原菌與接種用的菌株形態(tài)上一致。
2.3 苧麻炭疽病菌的形態(tài)特征及分類地位
2.3.1 形態(tài)學(xué)鑒定結(jié)果
苧麻炭疽病菌在 PDA 培養(yǎng)基上菌落呈圓形,菌落邊緣整齊。 菌絲匍匐狀,稀疏至茂密,大部分菌株菌絲最初為白色,隨著培養(yǎng)時間的延長慢慢變?yōu)榈疑械氖呛稚?、墨綠色(圖 4-A1、B1、C1、D1)。 分生孢子橘紅色,有的點(diǎn)狀分布,有的成片分布,分生孢子單胞,無色透明,卵圓形,有的內(nèi)含油球(圖 4-A2、B2、C2、C3、D2)。 有的菌株具黑色或者褐色剛毛,有分隔,頂端尖銳(圖 4-D3)。 分生孢子梗簇生或單生,無色或淡褐色,直或彎曲,具分隔,基部略膨大。 菌絲有隔,直徑2.55~3.83 μm,平均 3.01 μm。 孢身大小及孢子長寬比例見表 1。 查閱真菌鑒定手冊,根據(jù)病菌形態(tài)特征,初步判定苧麻炭疽菌病原為膠孢炭疽菌 C. gloeosporioides(膠孢炭疽菌剛毛少,分生孢子圓筒形,(11~18)μm×(4~6)μm)和希金斯炭疽菌 C. higginsianum(希金斯炭疽菌分生孢子盤上有剛毛數(shù)根,分生孢子長橢圓或圓筒形,兩端鈍圓,無色,單胞,(15~21)μm×(3.0~5.5)μm)。
表1 苧麻炭疽菌代表性菌株分生孢子大小測定
2.3.2 分子生物學(xué)鑒定結(jié)果
選取具有正常致病力且經(jīng)過柯赫氏法則驗(yàn)證的 14 個菌株進(jìn)行 ITS 基因克隆和測序,將分離菌株的測序結(jié)果在 GenBank 中進(jìn)行 BLAST 比對。 比對結(jié)果顯示,菌株與膠孢炭疽菌 C. gloeospori?oides、果生炭疽菌 C. fructicol、暹羅炭疽菌 C. siamense 和希金斯炭疽菌 C. higginsianum 的同源性達(dá)97% ~99%(Accession number:FJ515005、FJ459930、HM016798、AB042317.1、GU935872.1)。 而且序列比對中發(fā)現(xiàn),C. gloeosporioides、C. fructicola、C. siamense 和 C. higginsianum 這 4 類植物炭疽菌病原的 ITS 序列本身同源性高達(dá) 99%,單通過 ITS 基因無法將菌株鑒定到種。
進(jìn)一步對測試菌株進(jìn)行 β-tubulin 基因的克隆。 表 2 中列舉了菌株的來源和 β-tubulin 基因在NCBI 上的登錄號。 將分離菌株的 β-tubulin 基因測序結(jié)果在 GenBank 中進(jìn)行 BLAST 比對,查找相似物種的 β-tubulin 序列,使用 MEGA 7.0 最大似然法對相似性較高的菌株及同屬不同種菌株進(jìn)行分子系統(tǒng)發(fā)育分析(圖 5)。 結(jié)果顯示,從湖南采集的菌株中鑒定出 3 個炭疽菌屬的病菌:C. fructi?cola、C. siamense 和 C. gloeosporioides;湖北武漢的材料中包括種 C. fructicola 和 C. gloeosporioides;江西的菌株中,并未分離到 C. gloeosporioides,分離的菌株為 C. fructicola 和 C. siamense。 采自湖北咸寧的材料,通過 β-tubulin 比對,與人參生刺盤孢 C. panacicola 和希金斯炭疽菌 C. higginsianum 的同源性都為 99%,而這兩個病原菌屬于 C. destructivum species complex 復(fù)合群,所以分子序列上同源性很高。 真菌鑒定手冊記載希金斯炭疽菌 C. higginsianum 分生孢子盤上有剛毛數(shù)根,分生孢子圓筒形,(15~21)μm×(3.0~5.5)μm。 本試驗(yàn)中分離自咸寧的菌株其分子孢子特性(圖 4-D1~ D3,表 1)與 C. higginsianum 的描述一致,再結(jié)合分子檢測的結(jié)果,判定分離自咸寧的菌株屬于 C. hig?ginsianum。
表2 基于 β-tubulin 基因的系統(tǒng)發(fā)育分析所用菌株信息
3 討論與結(jié)論
苧麻炭疽病由植物炭疽菌屬(Colletothrichcum spp.)真菌引起。 該屬真菌是一類全球性分布的重要植物病原菌,被列為全球第八大植物病原真菌[19]。 目前已報道約 176 屬 190 余種植物可被炭疽菌侵染[20]。 炭疽菌類真菌命名方式和系統(tǒng)分類方法發(fā)生過數(shù)次重大的變更,存在種間性狀交叉和系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系不清的問題。 1831—1957 年,其分類依據(jù)主要以寄主范圍為主,即只要從一種尚未報道的寄主上分離獲得該屬真菌,即被視為新種。 該時期至少 750 個新種被描述,導(dǎo)致許多物種同物異名。 Von Arx 發(fā)現(xiàn)該屬真菌分類混亂,依據(jù)分生孢子和產(chǎn)孢細(xì)胞等顯微形態(tài)特征,并結(jié)合純培養(yǎng)特征,將 750 多個種合并為 11 個種[21]。 Sutton 在 Von Arx 的分類基礎(chǔ)上,于 1962—1992 年,以分生孢子和附著胞形態(tài)特征,結(jié)合純培養(yǎng)物特征和寄主范圍,把該屬擴(kuò)展到包含部分復(fù)合種的39 個種[22]。 2009—2019 年,Damm 等[23-24]分別對存在爭議的種的混亂問題又進(jìn)行整理。 目前,炭疽菌屬共包括 14 個復(fù)合種,其中 C. gloeosporioides 復(fù)合種包括 38 個近似的物種[25],近年又?jǐn)U展至22 個復(fù)合種[26]。
準(zhǔn)確區(qū)分和鑒定病害的病原菌是制定病害有效防御策略的基礎(chǔ)。 對病原真菌的鑒定,常以純培養(yǎng)物上產(chǎn)生的分生孢子、附著胞、分生孢子梗和產(chǎn)孢細(xì)胞的形態(tài)和大小等特征進(jìn)行形態(tài)學(xué)鑒定[27]。 對于特征明顯的炭疽菌種采用形態(tài)學(xué)能夠容易被鑒定出來,但是某些近似炭疽菌種卻難以準(zhǔn)確區(qū)分,比如 Liu 等[28]認(rèn)為膠孢炭疽菌 C. gloeosporioides、暹羅炭疽 C. simense 和果生炭疽菌C. fruticola等一些近種,其菌落形態(tài)存在細(xì)微差異,單依據(jù)分生孢子形態(tài)和大小很難明顯區(qū)分,并且一些菌株形態(tài)學(xué)特征不夠穩(wěn)定,易受培養(yǎng)條件的影響。 真菌的分子鑒定是從基因水平上反映菌株間遺傳特性,DNA 序列特征不會隨環(huán)境的改變而變化,特異性高,準(zhǔn)確可靠,借助分子手段進(jìn)行輔助鑒定可以彌補(bǔ)形態(tài)學(xué)鑒定的不足[29]。 除病毒以外,所有生物都具有核糖體基因轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(ITS 序列)區(qū)段的基因,該序列種間高度保守,可作為研究生物系統(tǒng)進(jìn)化及分類的依據(jù)[30]。 另外基于膠孢炭疽菌 C. gloeosporioides 復(fù)合種的病原種類多,單選用 ITS 序列可能無法對小種進(jìn)行有效的區(qū)分。 目前,基于多基因序列分析,將 ITS 基因、肌動蛋白基因(Actin gene,ACT)[30]和 β-微管蛋白基因(β-tubulin,TUB2)[31]、幾丁質(zhì)合成酶 A 基因( chitin synthase A gene,CHS1)等[32]序列進(jìn)行聯(lián)合分析用于炭疽菌的分子鑒定,能較好地區(qū)分炭疽菌屬真菌的大部分種。
本研究對采集自我國苧麻主產(chǎn)區(qū)的苧麻炭疽病病株進(jìn)行病原菌的分離,首先通過形態(tài)學(xué)對分離的病菌進(jìn)行分析,初步判定引起苧麻炭疽病病原是刺盤孢菌屬中的膠孢炭疽菌 C. gloeospori?oides。 通過對 ITS 序列的克隆發(fā)現(xiàn)膠孢炭疽菌 C. gloeosporioides、果生炭疽菌 C. fructicol、暹羅炭疽菌 C. siamense 和希金斯炭疽菌 C. higginsianum 4 類炭疽菌的 ITS 序列本身有很高的同源,甚至同源性達(dá) 99%,單通過 ITS 基因無法將菌株進(jìn)行鑒定到種。 所以通過本研究可以推斷 ITS 序列無法對引起苧麻炭疽病的病原菌鑒定到種。 進(jìn)一步通過微管蛋白 β-tubulin 基因的克隆和肌動蛋白基因(Actin gene,ACT)(結(jié)果未顯示)的克隆多基因聯(lián)合分析,結(jié)果確定引起苧麻炭疽病的病原菌為膠孢炭疽菌 C. gloeosporioides[33]、果生炭疽菌 C. fructicola、暹羅炭疽菌 C. siamense 和希金斯炭疽菌C. higginsianum[34]。 微管蛋白 β-tubulin 基因的克隆和肌動蛋白基因(Actin gene,ACT)可以對苧麻炭疽菌進(jìn)行小種間的鑒定。 依據(jù)新的炭疽菌種的分類方法,膠孢炭疽菌 C. gloeosporioides、果生炭疽菌 C. fructicola、暹羅炭疽菌 C. siamense 隸屬于膠孢炭疽菌復(fù)合群 C. gloeosporioides complex,希金斯炭疽菌 C. higginsianum 屬于毀滅炭疽菌 C. destructivum complex 復(fù)合群。
本研究對我國苧麻主產(chǎn)區(qū)湖北省、湖南省和江西省的苧麻炭疽病病原菌進(jìn)行了分離和鑒定,為病菌生物學(xué)特性及其致病基因的研究奠定了基礎(chǔ)。 鑒定出的 4 類病原菌在苧麻上引起病害的發(fā)生規(guī)律以及各苧麻生長地區(qū)中優(yōu)勢種群和病菌的致病基因、致病力分化、遺傳多樣性等還需要進(jìn)一步研究和分析。 對病原菌進(jìn)行基因組測序,利用生物信息學(xué)方法進(jìn)行組學(xué)序列分析、基因功能注釋和比較基因組學(xué)分析,是研究植物病原菌間基因變異重組、突變以及插入/ 缺失、遺傳多樣性、致病力分化機(jī)制的有效方法[35]。 全基因組分析已用于柑橘潰瘍病菌、水稻稻瘟病菌、芽孢桿菌、芒果炭疽菌等多種病原菌的基因組分析。 大量病原菌全基因組測序及比較基因組研究文獻(xiàn)和炭疽菌全基因組序列數(shù)據(jù),將有助于苧麻炭疽菌基因組測序、組裝和功能基因的預(yù)測。
參考文獻(xiàn)
[1]白雪花,王延周,魏憶萍,等.298份苧麻種質(zhì)資源纖維產(chǎn)量性狀綜合評價[J].植物遺傳資源學(xué)報,2022,23(1):106-122.
[2]熊常財,曾糧斌,李景柱,等.苧麻主要病害的發(fā)生及防治[J].中國麻業(yè)科學(xué),2012,34(5):220-225.
[3]李瑞明,馬輝剛.苧麻炭疽病發(fā)生及防治研究[J].植物保護(hù)學(xué)報,1993(1):83-89.
[4]羅俊國.苧麻炭疽病病菌的培養(yǎng)性狀和苧麻品種對炭疽病的抗性[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),1991(12):18-19.
[5]羅詩潔,曹曉蘭.苧麻種質(zhì)資源信息平臺的構(gòu)建[J].中國麻業(yè)科學(xué),2022,44(2):73-79.
[6]付虹雨,王薇,廖澳,等.基于無人機(jī)遙感的苧麻優(yōu)質(zhì)種質(zhì)資源篩選[J].智慧農(nóng)業(yè)(中英文),2022:1-10.
[7]崔忠剛,吳文梅,楊燕,等.飼用苧麻新品種“川飼苧3號”的選育[J].養(yǎng)殖與飼料,2022,21(10):42-45.
[8]于娜,陳曉蓉,石亞亮,等.苧麻kinesin基因家族全基因組鑒定與表達(dá)分析[J].中國麻業(yè)科學(xué),2022,44(1):13-26.
[9]FU H,WANG C,CUI G,et al.Ramie yield estimation based on UAV RGB images[J].Sensors (Basel),2021,21(2):669.
[10]CUI D,CUI G,YANG R,et al.Phenotypic characteristics of ramie (Boehmeria nivea L.) germplasm resources based on UAV remote sensing[J].Genetic Resources and Crop Evolution,2021,68(2):551-566.
[11]戴芳瀾.外人在華采集真菌考[J].植物病理學(xué)報,1979(1):7-11.
[12]王緒霞,湯滌洛,劉立軍.苧麻炭疽菌研究進(jìn)展[J].中國麻業(yè)科學(xué),2022,44(2):119-125.
[13]陳洪福.苧麻幾種常見病害及其防治[J].中國麻作,1986(3):25-27.
[14]李瑞明,鄧程振,曾永三,等.江西苧麻病害調(diào)查[J].江西植保,1987(2):22-23.
[15]王成彬,涂艷,姜寧,等.楸樹炭疽病菌的分離與鑒定[J].植物病理學(xué)報,2022:1-5.
[16]方中達(dá),許志綱.鐵鹽對水稻白葉枯病菌噬菌體的鈍化作用[J].植物病理學(xué)報,1979(1):21-26.
[17]Kerry O,Elizabeth C.Two divergent intragenomic rDNA ITS2 types within a monophyletic lineage of the fungus Fusarium are Nonorthologous[J].Molecular Phylogenetics and Evolution,1997,7(1):103-116.
[18]JIAN Y,LI Y,TANG G,et al.Identification of Colletotrichum species associated with anthracnose disease of strawberry in Sichuan Province,China[J].Plant Disease,2021,105(10):3025-3036.
[19]Mansfield J,Genin S,Magori S,et al.Top 10 plant pathogenic bacteria in molecular plant pathology[J].Molecular Plant Pathology,2012,13(6):614-629.
[20]Da S L,Moreno H,Correia H,et al.Colletotrichum:species complexes,lifestyle,and peculiarities of some sources of genetic variability[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2020,104(5):1891-1904.
[21]Von Arx J A.Die arten derguttung Colletotrichum[J].Phytopathol Z,1957,29:413-468.
[22]Sutton B C.Fungi imperfecti with pycnicia,acervuli and stromata[M].Surrey,England:Common Wealth Mycological Institute,1980:523-537.
[23]Damm U,Sato T,Alizadeh A,et al.The Colletotrichum dracaenophilum,C.magnum and C.orchidearum species complexes[J].Studies in Mycology,2019,92:1-46.
[24]Damm U,Sun Y,Huang C.Colletotrichum eriobotryae sp.nov.and C.nymphaeae,the anthracnose pathogens of loquat fruit in central Taiwan,and their sensitivity to azoxystrobin[J].Mycological Progress,2020,19(4):367-380.
[25]Jayawardena R S.Notes on currently accepted species of Colletotrichum[J].Mycosphere,2016,7(8):1197-1260.
[26]Vieira W,Bezerra P A,Silva A,et al.Optimal markers for the identification of Colletotrichum species[J].Molecular Phylogenetics and Evolution,2020,143:106694.
[27]LIU F,WANG M,Damm U,et al.Species boundaries in plant pathogenic fungi:a Colletotrichum case study.[J].BMC Evolutionary Biology,2016,16(1):81.
[28]LIU F,TANG G,ZHENG X,et al.Molecular and phenotypic characterization of Colletotrichum species associated with anthracnose disease in peppers from Sichuan Province,China[J].Scientific Reports ,2016,6:32761.
[29]Silva Rojas H V,Ávila Quezada G D.Phylogenetic and morphological identification of Colletotrichum boninense:a novel causal agent of anthracnose in avocado[J].Plant Pathology,2011,60(5):899-908.
[30]Khodadadi F,Gonzalez J B,Martin P L,et al.Identification and characterization of Colletotrichum species causing apple bitter rot in New York and description of C.noveboracense sp.nov[J].Scientific Reports ,2020,10(1):11043.
[31]WANG Y,CHEN J Y,XU X,et al.Identification and characterization of Colletotrichum species associated with anthracnose disease of Camellia oleifera in China[J].Plant Disease,2020,104(2):474-482.
[32]FU M,Crous P W,BAI Q,et al.Colletotrichum species associated with anthracnose of Pyrus spp.in China[J].Persoonia,2019,42:1-35.
[33]WANG X X,WANG B,LIU J L,et al.First report of anthracnose caused by Colletotrichum gloeosporioides on ramie in China[J].Plant Disease,2010,94(12):1508.
[34]WANG X X,CHEN J,WANG B,et al.First report of anthracnose on Boehmeria nivea caused by Colletotrichum higginsianum in China[J].Plant Disease,2011,95(10):1318.
[35]文增葉,李定華,代夢瑤,等.尖孢鐮刀菌全基因組測序及其致病相關(guān)基因分析[J].基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué),2020,39(3):1105-1112.
文章摘自:王緒霞,湯滌洛,彭洪翠等.苧麻炭疽病病原菌的分離與鑒定[J].中國麻業(yè)科學(xué),2023,45(02):88-96.
