摘 要：本發(fā)明涉及一種利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，包括步驟：將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶按設(shè)定配比加入水中，制備亞麻水解液；采用培養(yǎng)基，加入亞麻水解液作為培養(yǎng)基的碳源，加入酵母膏、蛋白胨和牛肉膏中的至少一種作為培養(yǎng)基的氮源，培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素；對(duì)細(xì)菌纖維素進(jìn)行純化。本發(fā)明的有益效果是：本發(fā)明采用培養(yǎng)基及生物處理的手段，首次提出將亞麻下腳料用于制備細(xì)菌纖維素，相比現(xiàn)有工藝回收亞麻下腳料并用回紡織產(chǎn)品中，本發(fā)明的處理工藝更為簡(jiǎn)單，成本更低；且對(duì)制得的細(xì)菌纖維素進(jìn)行后處理，能夠消除細(xì)胞的殘余吸附，能夠獲得更純的細(xì)菌纖維素，制備的細(xì)菌纖維素純度較高。
技術(shù)要點(diǎn)
1.一種利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于，包括以下步驟：
步驟1、將亞麻下腳料粉碎至設(shè)定粒徑范圍內(nèi)，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶按設(shè)定配比加入水中，采用超聲波振蕩水解后，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，分離出的液體為亞麻水解液；通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；
步驟2、取設(shè)定量的亞麻水解液作為培養(yǎng)基的碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)；向培養(yǎng)基內(nèi)補(bǔ)加氮源；對(duì)培養(yǎng)基進(jìn)行滅菌；在培養(yǎng)基中接種木醋桿菌后，在恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)設(shè)定時(shí)長(zhǎng)后，培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
2. 根據(jù)權(quán)利要求1所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：步驟1中將5～8g亞麻下腳料粉碎至500～1000目粒徑范圍內(nèi)；亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶的加入配比為每克亞麻下腳料對(duì)應(yīng)0.05～50U纖維素酶和0.05～50U木聚糖酶；亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：3～1：10。
3. 根據(jù)權(quán)利要求2所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：步驟2中，以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，取亞麻水解液作為培養(yǎng)基的碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，亞麻水解液的加入量占培養(yǎng)基重量的10?40%；向培養(yǎng)基內(nèi)加入培養(yǎng)基重量0.1～1％的氮源；在115℃～125℃下對(duì)加入碳源和氮源的培養(yǎng)基滅菌15～25min后，取出培養(yǎng)基置于紫外燈下殺菌0.5～1.5h后，靜置直至培養(yǎng)基冷卻；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量3％～7％的木醋桿菌后，將培養(yǎng)基在20～40℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7～20天，培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
4. 根據(jù)權(quán)利要求1所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：步驟1中超聲波振蕩水解的條件是在30～55℃，20～40rpm，28～40KHz下水解6～72h。
5. 根據(jù)權(quán)利要求1所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：步驟1中對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離的方式包括離心分離或過(guò)濾分離；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
6. 根據(jù)權(quán)利要求1所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：步驟2中氮源為酵母膏、蛋白胨和牛肉膏中的至少一種。
7.根據(jù)權(quán)利要求6所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：蛋白胨選用胰蛋白胨。
8. 根據(jù)權(quán)利要求1所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：步驟2中培養(yǎng)基的碳源還為亞麻水解液和還原糖的組合；培養(yǎng)基中還原糖的質(zhì)量占比為50～200g/L；對(duì)應(yīng)氮源選用質(zhì)量占比為培養(yǎng)基質(zhì)量0.1～0.5％的酵母膏和質(zhì)量占比為培養(yǎng)基質(zhì)量0.1～0.5％的胰蛋白胨；培養(yǎng)基的pH為4～7。
9. 根據(jù)權(quán)利要求1所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于，步驟2之后還包括細(xì)菌纖維素的純化步驟：將步驟2培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素，浸在NaOH溶液中，并在設(shè)定溫度下，對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱設(shè)定時(shí)長(zhǎng)，然后用去離子水沖洗，最后再冷凍干燥設(shè)定時(shí)長(zhǎng)，得到細(xì)菌纖維素干膜。
10.根據(jù)權(quán)利要求9所述利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，其特征在于：NaOH溶液的濃度為1%；在80℃下對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱；對(duì)經(jīng)過(guò)去離子水沖洗后的細(xì)菌纖維素在?65℃下采用冷凍干燥機(jī)進(jìn)行冷凍干燥12h。
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明屬于細(xì)菌纖維素制備技術(shù)領(lǐng)域，尤其涉及一種利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法。
背景技術(shù)
亞麻作為一種農(nóng)作物產(chǎn)品，多用于紡織業(yè)中制備亞麻紡織品；但是在紡織過(guò)程中并不能充分利用亞麻原料，會(huì)產(chǎn)生一些亞麻下腳料；在現(xiàn)有的工藝流程中，對(duì)于亞麻下腳料的利用手段較少。
CN104726969A公開了一種亞麻下腳料加工工藝，采用生物技術(shù)處理亞麻下腳料，處理后的亞麻纖維可以直接和各種高檔纖維(彩棉、羊毛、羊絨、真絲、天絲等)混紡，可廣泛用于服裝面料、床上用品、擴(kuò)大了亞麻制品應(yīng)用領(lǐng)域。然而，將亞麻下腳料回收并重新用于制備亞麻制品，工藝復(fù)雜且成本較高，并且亞麻下腳料的品質(zhì)相比亞麻原料，品質(zhì)下降，僅能用來(lái)與高檔纖維混紡，經(jīng)濟(jì)效益較低。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的是克服現(xiàn)有技術(shù)中的不足，提供一種利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法。
這種利用亞麻下腳料制備細(xì)菌纖維素的方法，包括以下步驟：
步驟1、將亞麻下腳料粉碎至設(shè)定粒徑范圍內(nèi)，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶按設(shè)定配比加入水中，采用超聲波振蕩水解后，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，分離出的液體為亞麻水解液；通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；
步驟2、取設(shè)定量的亞麻水解液作為培養(yǎng)基的碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)；向培養(yǎng)基內(nèi)補(bǔ)加氮源；對(duì)培養(yǎng)基進(jìn)行滅菌；在培養(yǎng)基中接種木醋桿菌后，在恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)設(shè)定時(shí)長(zhǎng)后，培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
作為優(yōu)選，步驟1中將5～8g亞麻下腳料粉碎至500～1000目粒徑范圍內(nèi)；亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶的加入配比為每克亞麻下腳料對(duì)應(yīng)0.05～50U纖維素酶和0.05～50U木聚糖酶；亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：3～1：10。
作為優(yōu)選，步驟2中，以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，取亞麻水解液作為培養(yǎng)基的碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，亞麻水解液的加入量占培養(yǎng)基重量的10?40％；向培養(yǎng)基內(nèi)加入培養(yǎng)基重量0.1～1％的氮源；在115℃～125℃下對(duì)加入碳源和氮源的培養(yǎng)基滅菌15～25min后，取出培養(yǎng)基置于紫外燈下殺菌0.5～1.5h后，靜置直至培養(yǎng)基冷卻；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量3％～7％的木醋桿菌后，將培養(yǎng)基在20～40℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7～20天，培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
作為優(yōu)選，步驟1中超聲波振蕩水解的條件是在30～55℃，20～40rpm，28～40KHz下水解6～72h。
作為優(yōu)選，步驟1中對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離的方式包括離心分離或過(guò)濾分離；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
作為優(yōu)選，步驟2中氮源為酵母膏、蛋白胨和牛肉膏中的至少一種。
作為優(yōu)選，蛋白胨選用胰蛋白胨。
作為優(yōu)選，步驟2中培養(yǎng)基的碳源還為亞麻水解液和還原糖的組合，因?yàn)閬喡樗庖褐械奶嫁D(zhuǎn)換成培養(yǎng)基所需的碳源需要一定周期，以防止亞麻水解液中的碳含量來(lái)不及滿足培養(yǎng)基對(duì)于碳源的需求；培養(yǎng)基中還原糖的質(zhì)量占比為50～200g/L；對(duì)應(yīng)氮源選用質(zhì)量占比為培養(yǎng)基質(zhì)量0.1～0.5％的酵母膏和質(zhì)量占比為培養(yǎng)基質(zhì)量0.1～0.5％的胰蛋白胨；培養(yǎng)基的pH為4～7。
作為優(yōu)選，因?yàn)槌醪街频玫募?xì)菌纖維素中含有雜質(zhì)，步驟2之后還包括細(xì)菌纖維素的純化步驟：將步驟2培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素，浸在NaOH溶液中，并在設(shè)定溫度下，對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱設(shè)定時(shí)長(zhǎng)，然后用去離子水沖洗，最后再冷凍干燥設(shè)定時(shí)長(zhǎng)，得到細(xì)菌纖維素干膜。
作為優(yōu)選，NaOH溶液的濃度為1％；在80℃下對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱；對(duì)經(jīng)過(guò)去離子水沖洗后的細(xì)菌纖維素在?65℃下采用冷凍干燥機(jī)進(jìn)行冷凍干燥12h。
本發(fā)明的有益效果是：本發(fā)明采用培養(yǎng)基及生物處理的手段，首次提出將亞麻下腳料用于制備細(xì)菌纖維素，相比現(xiàn)有工藝回收亞麻下腳料并用回紡織產(chǎn)品中，本發(fā)明的處理工藝更為簡(jiǎn)單，成本更低；且對(duì)制得的細(xì)菌纖維素進(jìn)行后處理，能夠消除細(xì)胞的殘余吸附，能夠獲得更純的細(xì)菌纖維素，制備的細(xì)菌纖維素純度較高。
附圖說(shuō)明
圖1為木醋桿菌細(xì)菌活性曲線圖；
圖2為細(xì)菌纖維素經(jīng)過(guò)三種方式處理后所得干膜的FTIR圖。
具體實(shí)施方式
下面結(jié)合實(shí)施例對(duì)本發(fā)明做進(jìn)一步描述。下述實(shí)施例的說(shuō)明只是用于幫助理解本發(fā)明。應(yīng)當(dāng)指出，對(duì)于本技術(shù)領(lǐng)域的普通人員來(lái)說(shuō)，在不脫離本發(fā)明原理的前提下，還可以對(duì)本發(fā)明進(jìn)行若干修飾，這些改進(jìn)和修飾也落入本發(fā)明權(quán)利要求的保護(hù)范圍內(nèi)。
實(shí)施例1
(1)將6g亞麻短纖等下腳料粉碎至粒徑為800目，按每克亞麻短纖等下腳料對(duì)應(yīng)20U纖維素酶和20U木聚糖酶，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中，亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：5；采用34KHz超聲波在50℃、20rpm的轉(zhuǎn)速下振蕩水解24h，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行離心分離或過(guò)濾分離，通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
(2)取上述占培養(yǎng)基重量10％的亞麻水解液作為碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，并向培養(yǎng)基中補(bǔ)加培養(yǎng)基重量占比0.5％酵母膏、胰蛋白胨和牛肉膏作為氮源；在120℃下對(duì)培養(yǎng)基滅菌20min后，取出培養(yǎng)基在紫外燈殺菌1h，然后冷卻培養(yǎng)基；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量3％的木醋桿菌，將接種后的培養(yǎng)基放置在恒溫培養(yǎng)箱中在20～35℃條件下靜態(tài)培養(yǎng)10天，于培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
(3)將步驟(2)培養(yǎng)出細(xì)菌纖維素的培養(yǎng)基制成液體狀，用移液槍吸取10μL需測(cè)試木醋桿菌細(xì)菌活性的液體狀的培養(yǎng)出細(xì)菌纖維素的培養(yǎng)基，接種到含100mL生理鹽水(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為9％的NaCl溶液)的錐形瓶中，并放置在震蕩培養(yǎng)箱中在27℃下動(dòng)態(tài)培養(yǎng)24h，形成溶液A；然后用移液槍吸取10μL溶液A，接種到固體培養(yǎng)基(含有葡萄糖100g、酵母膏10g、CaCO320g、瓊脂15g)上，將接種后的固體培養(yǎng)基在20～40℃下靜態(tài)培養(yǎng)24h；最后對(duì)接種后的固體培養(yǎng)基上的菌落數(shù)(CFU/mL)進(jìn)行對(duì)數(shù)計(jì)算，計(jì)算結(jié)果如圖1所示，由圖1可知，步驟(2)培養(yǎng)出細(xì)菌纖維素的培養(yǎng)基中取出的樣品中，木醋桿菌均具備活性，且在27℃攝氏度下靜態(tài)培養(yǎng)樣品時(shí)的木醋桿菌的菌落數(shù)最多。
實(shí)施例2
(1)將6g亞麻短纖等下腳料粉碎至粒徑為800目，下腳料與水的固液比為1：5，按每克亞麻短纖等下腳料對(duì)應(yīng)20U纖維素酶和20U木聚糖酶，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中，亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：5；用28KHz超聲波在50℃、20rpm的轉(zhuǎn)速下振蕩水解24h，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行離心分離或過(guò)濾分離，通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
(2)取上述占培養(yǎng)基重量40％的亞麻水解液作為碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，并向培養(yǎng)基中補(bǔ)加培養(yǎng)基重量占比0.5％酵母膏、胰蛋白胨和牛肉膏作為氮源；在120℃下對(duì)培養(yǎng)基滅菌20min后，取出培養(yǎng)基在紫外燈殺菌1h，然后冷卻培養(yǎng)基；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量3％的木醋桿菌，將接種后的培養(yǎng)基放置在恒溫培養(yǎng)箱中在28℃下靜態(tài)培養(yǎng)10天，于培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
(3)將步驟(2)培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素，浸在濃度為1％的NaOH溶液中，并在80℃下，對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱1h，然后用去離子水沖洗，最后在?65℃下采用冷凍干燥機(jī)進(jìn)行冷凍干燥12h，得到細(xì)菌纖維素干膜；所得細(xì)菌纖維素干膜使用電子天平稱重，細(xì)菌纖維素產(chǎn)量為9.1g/L。
實(shí)施例3
(1)將8g亞麻短纖等下腳料粉碎至粒徑為600目，按每克亞麻短纖等下腳料對(duì)應(yīng)30U纖維素酶和40U木聚糖酶，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中，亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：8；采用34KHz超聲波在45℃、40rpm的轉(zhuǎn)速下振蕩水解18h，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行離心分離或過(guò)濾分離，通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
(2)取上述占培養(yǎng)基重量25％的亞麻水解液作為碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，并向培養(yǎng)基中補(bǔ)加培養(yǎng)基重量占比0 .8％酵母膏、胰蛋白胨和牛肉膏作為氮源；在120℃下對(duì)培養(yǎng)基滅菌20min后，取出培養(yǎng)基在紫外燈殺菌1h，然后冷卻培養(yǎng)基；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量5％的木醋桿菌，將接種后的培養(yǎng)基放置在恒溫培養(yǎng)箱中在32℃條件下靜態(tài)培養(yǎng)10天，于培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
(3)將步驟(2)培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素，浸在濃度為1％的NaOH溶液中，并在80℃下，對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱1h，然后用去離子水沖洗，最后在?65℃下采用冷凍干燥機(jī)進(jìn)行冷凍干燥12h，得到細(xì)菌纖維素干膜；測(cè)定細(xì)菌纖維素干膜的結(jié)晶度為65.32％；可知細(xì)菌纖維素干膜的結(jié)晶度較高。
實(shí)施例4
(1)將5g亞麻短纖等下腳料粉碎至粒徑為500目，按每克亞麻短纖等下腳料對(duì)應(yīng)10U纖維素酶和10U木聚糖酶，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中，亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：5；采用34KHz超聲波在50℃、20rpm的轉(zhuǎn)速下振蕩水解12h，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行離心分離或過(guò)濾分離，通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
(2)取上述占培養(yǎng)基重量10％的亞麻水解液作為碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，并向培養(yǎng)基中補(bǔ)加培養(yǎng)基重量占比1％酵母膏、胰蛋白胨和牛肉膏作為氮源；在120℃下對(duì)培養(yǎng)基滅菌20min后，取出培養(yǎng)基在紫外燈殺菌1h，然后冷卻培養(yǎng)基；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量5％的木醋桿菌，將接種后的培養(yǎng)基放置在恒溫培養(yǎng)箱中在30℃條件下靜態(tài)培養(yǎng)10天，于培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
(3)將步驟(2)培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素，浸在濃度為1％的NaOH溶液中，并在80℃下，對(duì)浸有細(xì)菌纖維素的NaOH溶液水浴加熱1h，然后用去離子水沖洗，最后在?65℃下采用冷凍干燥機(jī)進(jìn)行冷凍干燥12h，得到細(xì)菌纖維素干膜；測(cè)定細(xì)菌纖維素干膜的水接觸角為20.8°，可知該細(xì)菌纖維素干膜的水接觸角符合要求。
實(shí)施例5
(1)將8g亞麻短纖等下腳料粉碎至粒徑為600目，按每克亞麻短纖等下腳料對(duì)應(yīng)30U纖維素酶和40U木聚糖酶，將粉碎后的亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中，亞麻下腳料、纖維素酶和木聚糖酶加入水中后，亞麻下腳料與水的固液比為1：8；采用34KHz超聲波在45℃、40rpm的轉(zhuǎn)速下振蕩水解18h，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行分離，對(duì)水解產(chǎn)物進(jìn)行離心分離或過(guò)濾分離，通過(guò)抽濾的方式收集亞麻水解液；選用離心分離時(shí)，離心分離后的上清液為亞麻水解液；選用過(guò)濾分離時(shí)，過(guò)濾所得液體為亞麻水解液。
(2)取上述占培養(yǎng)基重量40％的亞麻水解液作為碳源加入培養(yǎng)基內(nèi)，并向培養(yǎng)基中補(bǔ)加培養(yǎng)基重量占比0.8％酵母膏、胰蛋白胨和牛肉膏作為氮源；在120℃下對(duì)培養(yǎng)基滅菌20min后，取出培養(yǎng)基在紫外燈殺菌1h，然后冷卻培養(yǎng)基；以重量分?jǐn)?shù)計(jì)，在培養(yǎng)基中接種培養(yǎng)基重量5％的木醋桿菌，將接種后的培養(yǎng)基放置在恒溫培養(yǎng)箱中在32℃條件下靜態(tài)培養(yǎng)10天，于培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到細(xì)菌纖維素。
(3)將步驟(2)培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素，分別使用去離子水、無(wú)水乙醇(濃度為95％)和NaOH(濃度為1％)三種溶液對(duì)生成的細(xì)菌纖維素進(jìn)行后處理(后處理是為了消除細(xì)胞的殘余吸附，通過(guò)清洗能夠獲得更純的細(xì)菌纖維素)，進(jìn)一步對(duì)三種后處理方式的細(xì)菌纖維素膜進(jìn)行FTIR測(cè)試，測(cè)試結(jié)果如圖2所示；結(jié)果顯示，經(jīng)過(guò)NaOH溶液洗滌后細(xì)菌纖維素未從纖維素I結(jié)構(gòu)(天然纖維素結(jié)構(gòu))轉(zhuǎn)變?yōu)槔w維素II結(jié)構(gòu)(其他細(xì)菌纖維素結(jié)構(gòu))，表明本實(shí)施例經(jīng)過(guò)NaOH溶液洗滌后細(xì)菌纖維素與天然纖維素結(jié)構(gòu)的結(jié)構(gòu)一致，符合要求，因此用NaOH溶液對(duì)步驟(2)培養(yǎng)得到的細(xì)菌纖維素進(jìn)行提純洗滌，能達(dá)到制備目的。
摘自國(guó)家發(fā)明專利，發(fā)明人：迎春，鄭浩，鄭來(lái)久，鄭環(huán)達(dá)，申請(qǐng)?zhí)枺?/font>202310646236.1申請(qǐng)日：2023.06.02
